Aus dem Institut für Lebensmittelqualität und -sicherheit des

Eigene Untersuchungen
Kulturmedien sind: H-Vollmilch, Pepton, Natriumhydroxid, Natriumcarbonat,
Calciumcarbonat, Ascorbinsäure, Lactose-Monohydrat, Sucrose (Saccharose) und
Gelatine.
Für die Isolierung des Stammes wurde der Inhalt einer Hartkapsel in 10 ml MRS-
Bouillon (BI) überführt und homogenisiert. Die Inkubation erfolgte im Anaerobiertopf
für 24 h. Nach 24 h ± 2 h wurden 200 µl aus BI in eine neue MRS-Bouillon (BII)
überführt und für 24 h ± 2 h bebrütet. Nach 24 h ± 2 h wurden fraktionierte Ausstriche
auf MRS-Agarplatten (AI) im Doppelansatz durchgeführt und dann 48 h ± 2 h
inkubiert. Nach 48 h ± 2 h wurde das Wachstum makroskopisch und mikroskopisch
kontrolliert und jeweils eine Kolonie in neue MRS-Bouillon (BIII) überimpft.
Anschließend wurde erneut für 24 h ± 2 h inkubiert. Nach 24 h ± 2 h erfolgte
fraktioniertes Ausstreichen im Doppelansatz auf MRS-Agarplatten mit nachfolgender
Inkubation der Platten für 48 h ± 2 h. Nach Ablauf der Inkubationszeit von 48 h ± 2 h
wurde das Wachstum makroskopisch und mikroskopisch kontrolliert und
anschließend der Stamm in das Microbank-System, wie oben für S 24 und S 25
beschrieben überführt. Es wurden zwei Microbank-Röhrchen der Reinkultur
angefertigt und diese bei -80 °C ± 0,5 °C gelagert.
Schematisch dargestellt ist die Isolierung und Kultivierung von Lactobacillus gasseri
(S 28) in der Abbildung 7.
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