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136 XV JORNADAS CIENTÍFICAS DE LA S.E.O.C.<br />
prueba más utilizada hasta ahora es el ELISA indirecto<br />
para la cuantificación de anticuerpos en suero.<br />
Una de las ventajas sobre otras técnicas serológicas<br />
es la de no depender de un sistema tan complejo como<br />
es el del complemento, fácil automatización y lectura<br />
automática y el de detectar tasas de infección<br />
más bajas debido al efecto amplificador del sistema<br />
enzimático (MERKAL, 1984; BUERGELT, 1988J, pero<br />
esto puede ser un grave problema si no se selecciona<br />
bien el punto de corte. Otra de sus grandes ventajas<br />
es la de que es la más precoz de las pruebas serológicas<br />
debido a este efecto amplificador (MERKAL, 1983;<br />
BUERGELT, 1988), así ha sido señalado por EAMENS<br />
(1989) más precoz que la IDGA, incluso en ambientes<br />
de escasa prevalencia, si bien ambas pruebas son capaces<br />
de detectar los animales infectados al poco<br />
tiempo de comenzar a ser excretores, sobre todo en<br />
ambientes de elevada prevalencia (MERKAL, 1983).<br />
Así, presentaría un elevado valor, una vez realizada la<br />
seroconversión, al no estar influenciado por la tasa y<br />
dinámica de la excreción, estando considerado como<br />
el test serológico que más se aproxima a la prevalencia<br />
real de la enfermedad medida mediante cultivo<br />
(SHULAW, 1986). Por otra parte, el ELISA es el test<br />
serológico que se aproxima más a la prevalencia real<br />
de la paratuberculosis (SHULAW, 1986).<br />
Nuestro grupo ha desarrollado un test ELISA (MO<br />
LINA y cois., 1990), utilizando como fuente antigénica<br />
el PPA-3 (Protoplasmic Purified Antigens), producido<br />
a partir de la cepa NADC 18 de M. paratuberculosis<br />
(cepa núm. 1.227 del ATCC), aislada de vacuno y<br />
adaptada al crecimiento en cultivo, con una elevada<br />
sensibilidad (> 87%) y especificidad (> 93%). Utilizando<br />
un grupo de animales tuberculosos, la especificidad<br />
disminuyó a 67%. La absorción de estos sueros<br />
no modificó esta especifidad. Estos resultados son<br />
comparables a los obtenidos en ELISA para el diagnóstico<br />
de la tuberculosis humana (DANIEL y DABAN-<br />
NE, 1987) o en la paratuberculosis bovina (MERKAL,<br />
1973; JORGENSEN, 1978; THOEN, 1979; YOKOMIZO,<br />
1983 y 1985, y McLAUGHLIN, 1989) y superiores al<br />
resto de técnicas de diagnóstico serológico en cabras<br />
como la IDGA (EAMENS, 1989) o la contrainmunoelectroforesis<br />
(COLLINS, 1984).<br />
EVALUACIÓN DE LOS RESULTADOS DEL TEST<br />
En contraste con el dicotómico positivo o negativo<br />
de la mayoría de los test de diagnóstico serológicos, la<br />
absorbancia varía de una forma continua con la concentración<br />
de anticuerpos y su afinidad, por lo que<br />
hay que prestar una atención especial a la selección<br />
del punto de diferenciación positivo/negativo. El punto<br />
de corte escogido debe ser aquel que determine una<br />
mejor separación de positivos y negativos combinado<br />
con una sensibilidad no menor al 60% y una especificidad<br />
lo más alta posible, ya que la eficacia del test se<br />
ve más fuertemente influenciada por la especificidad<br />
que por la sensibilidad.<br />
La evaluación de la eficacia de un método de diagnóstico<br />
se basa en su sensibilidad, especificidad y valor<br />
predictivo. Las dos primeras son características<br />
intrínsecas al test si se considera dentro de determinadas<br />
condiciones (al estar influenciado por la etapa<br />
de la enfermedad que predomine). La sensibilidad se<br />
define como el porcentaje de animales positivos al<br />
test dentro de los animales realmente afectados, es<br />
un índice inverso do los falsos negativos que determina<br />
el test. La especificidad se define como el porcentaje<br />
de animales negativos dentro de los realmente<br />
sanos y es por tanto un índice inverso de los falsos positivos<br />
a que d;i lugar el test. A bajas prevalencias de<br />
la enfermedad el ELISA se vuelve más insensible al<br />
predominar los animales menos afectados (LESLIE,<br />
1988), como podemos observar en esta tabla, donde<br />
se muestran diferentes sensibilidades del mismo test<br />
ELISA:<br />
Cultivo ...<br />
ELISA<br />
AGID<br />
Infección<br />
experimental<br />
2,3<br />
5,2<br />
5,3<br />
Exposición<br />
ambiente<br />
ligero<br />
13,4<br />
8<br />
21<br />
Exposición<br />
ambiente<br />
medio<br />
4,0<br />
5<br />
24<br />
La sensibilidad y especifidad son muy variables, dependiendo<br />
del ELISA utilizado, el antígeno, el punto<br />
de corte, la proporción de animales altos/bajos excretores<br />
de la población a analizar, así como de otros<br />
factores indirectos como son el manejo, prevalencia<br />
de otras enfermedades como la tuberculosis, etc.; por<br />
ejemplo, para THOEN y cois. (1983, 1988) la sensibilidad<br />
variaría desde 78-100 y la especificidad desde<br />
86-95,6%; en el mismo sentido DE LISLE y cois.<br />
(1983) presenta unos valores del 86-89% y 80-88%",<br />
respectivamente; para WOOD y cois. (1989) presenta<br />
una sensibilidad global en torno al 80,8%, variando<br />
desde un 54,5 en animales en fase subclínica y un<br />
100% en animales en fase clínica. Para JORGENSEN y<br />
cois. (1987) presentaría una sensibilidad buena en<br />
animales de baja excreción y cercana al 100% en animales<br />
de fuerte excreción; así en animales de uno-dos<br />
años la sensibilidad era del 75% para los que eliminaban<br />
50-100 b/g (límite de detección del cultivo) y pasa<br />
al 80% en excreciones mayores a 500 b/g de heces en<br />
animales de más de dos años: 89 y 97%, respectivamente<br />
(JORGENSEN, 1983).<br />
El valor predictivo teórico se define como la capacidad<br />
del test de reflejar la situación real del rebaño<br />
(probabilidad de que el resultado del test sea correcto)<br />
y se basa en la sensibilidad y especificidad del test<br />
y en la prevalencia de la enfermedad en el rebaño.<br />
Así se puede definir un valor predictivo positivo (probabilidad<br />
de que un animal positivo al test esté realmente<br />
afectado) y un valor predictivo negativo (probabilidad<br />
de que un animal negativo al test no se encuentre<br />
infectado). Su cálculo se apoya en las<br />
fórmulas bayesianas de probabilidad modificadas por<br />
VECCHIO (1966).<br />
Representando los VP+ y VP- en función de la espe-