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EFECTO DEL MÉTODO DE CONGELACIÓN SOBRE LA CALIDAD IN VITRO DEL SEMEN... 83<br />
Tabla I<br />
Estudio de las mínimas diferencias significativas entre<br />
las etapas de cada método de congelación según los<br />
tres parámetros estudiados. Distintas letras indican<br />
valores estadísticamente diferentes<br />
flítodo<br />
de<br />
Corteel<br />
flétodo<br />
da -Ritar<br />
y Salaraon<br />
ñotilidad<br />
Acrosoaías<br />
Endósaosis<br />
(lotüidad<br />
Acrosonías<br />
Endosóosis<br />
Etapa 1<br />
A,C<br />
A<br />
A<br />
A<br />
A<br />
A<br />
Etapa 2<br />
B<br />
A<br />
6<br />
A,B<br />
B<br />
A<br />
Etapa 3<br />
A<br />
A<br />
A<br />
B<br />
C<br />
A<br />
Etapa 4<br />
C<br />
B<br />
A<br />
B<br />
C<br />
B<br />
Etapa 5<br />
pone una pérdida de viabilidad. Comparando los resultados<br />
de la primera dilución (etapa 1) y la pre-refrigeración<br />
(etapa 3) no existen diferencias significativas<br />
en ninguno de los tres parámetros estudiados. La<br />
solución de lavado utilizada en el método B, sin embargo,<br />
sí sjrpone un efecto perjudicial, al menos en<br />
cuanto a motilidad y acrosomas normales.<br />
La refrigeración, sin embargo, no supone una disminución<br />
de la viabilidad con el diluyente a base de<br />
yema de huevo. Comparando los resultados obtenidos<br />
al final del período de equilibración, justo antes de la<br />
congelación (etapa 4), en el método B, se puede observar<br />
que los acrosomas y la motilidad mantienen<br />
valores semejantes a los de la etapa 3, es decir, antes<br />
de comenzar la refrigeración. El diluyente a base de<br />
leche descremada (método A), en cambio, no es capaz<br />
de aportar una acción protectora de la misma calidad,<br />
y por ello hay una disminución significativa de la<br />
motilidad y de los acrosomas normales.<br />
El semen de macho cabrío es muy sensible al choque<br />
frío (8) y la yema de huevo es un gran sistema de<br />
protección durante la refrigeración, posiblemente por<br />
esa razón el método B permite que los espermatozoides<br />
estén en mejores condiciones antes de la congelación.<br />
Los datos obtenidos a partir de la prueba de endósmosis<br />
resultan difíciles de valorar. Una posible explicación<br />
de la bajada en la capacidad de reacción durante<br />
la etapa 2 con el método de CORTEEL es que la<br />
solución de lavado utilizada en esta técnica es hipoosmótica<br />
de por sí, con lo cual la diferencia entre ésta y<br />
la solución de endósmosis es menor y la endósmosis<br />
posiblemente tenga lugar más rápidamente. De confirmarse<br />
este hecho, al cabo de treinta minutos, que<br />
es el tiempo establecido en nuestro protocolo, numerosos<br />
espermatozoides ya habrían roto su membrana,<br />
apareciendo al microscopio como si no hubieran reaccionado.<br />
Esta característica de la solución de lavado explica<br />
B<br />
C<br />
B<br />
C<br />
D<br />
B<br />
también por qué hay una bajada significativa de la<br />
motilidad en esta etapa 2 del método A. Los espermatozoides<br />
reaccionan a una baja presión osmótica captando<br />
agua, al ser la membrana plasmática inelástica;<br />
con el aumento de volumen intracelular, se produce<br />
un impedimento físico para el funcionamiento normal<br />
del flagelo, lo que da lugar a una motilidad inferior y<br />
de peor calidad.<br />
Por último, es de destacar el comportamiento en la<br />
prueba de endósmosis de los espermatozoides refrigerados<br />
por la técnica 2. Hay una diferencia muy significativa<br />
en la capacidad de reacción desde la prerrefrigeración<br />
(etapa 3) a la precongelación, que puede<br />
ser debida a varias causas; la primera es que efectivamente<br />
con esta técnica se producen muchas lesiones<br />
de la membrana plasmática. Sin embargo, los altos<br />
valores de motilidad y acrosomas íntegros no parecen<br />
coincidir con esta posibilidad. Otra explicación<br />
podría ser que la prueba de endósmosis realizada antes<br />
de la congelación, y puesta a punto para esperma<br />
recién recogido, no sea la adecuada para células que<br />
ya han sufrido un período de equilibración con crioprotectores<br />
penetrantes (glicerol) y no penetrantes<br />
(yema de huevo), que de alguna manera hayan podido<br />
alterar la difusión del agua a través de la membrana.<br />
Es más plausible que el efecto sea debido al recubrimiento<br />
que del espermatozoide hacen las proteínas<br />
de la yema de huevo, porque el glicerol está presente<br />
tanto en el diluyente de RITAR y SALAMON como en<br />
el de CORTEEL, y en este último en un porcentaje mayor.<br />
CONCLUSIONES<br />
Según nuestros datos, parece más aconsejable utilizar<br />
la técnica de CORTEEL para la congelación de semen<br />
de macho cabrío de raza Verata. Esta confiere<br />
una buena protección durante la fase de lavado y<br />
también en el proceso de congelación propiamente dicho.<br />
Sin embargo, el diluyente de CORTEEL no aporta<br />
condiciones óptimas durante la refrigeración, siendo<br />
mejor el descrito por RITAR y SALAMON. Es muy posible<br />
que este defecto en la primera técnica pueda ser<br />
paliado añadiendo al diluyente de leche descremada<br />
alguna proteína de mejor acción crioprotectora.<br />
BIBLIOGRAFÍA<br />
1. CORTEEL, J. M.: «Viabilité des spermatozoides de<br />
bous conserves et congeles avec ou sans leur plasma<br />
seminal: effet du glucose». Ann. Biol. Anim. Biophys.,<br />
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2. CORTEEL, J. M.; BARIL, G.; LEBOEUF, B., y NUNES, J.<br />
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Animal Reproduction, editado por M. Courot, Martinus<br />
Nijhoff, La Haya, 1984.<br />
3. CORTEEL, J. M., y PAQUINON, M.: «Preservation of the<br />
male gamete (Ram, Buck, Boar)». X Congreso Internacional<br />
de Reproducción Animal e Inseminación Artificial<br />
Urbana, vol. II: 20-27,1984.