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INGENERIA GENÉTICA APLICADA A LA PRODUCCIÓN DE PEQUEÑOS RUMIANTES i 7<br />
luar el nivel de expresión. De esta forma al incluir alguna<br />
de estas células en el blastocito se sabe que de<br />
formar quimeras que afecten a la línea germinal, la<br />
siguiente generación será transgénica.<br />
La metodología utilizada para la inyección de las<br />
células consiste en su aislamiento de cultivo, a continuación<br />
se colocan en una aguja de inyección y, con la<br />
ayuda de ésta, se expelen en el blastocele de un blastocisto.<br />
Hay que dirigir la inyección hacia la masa celular<br />
interna con la esperanza de que alguna de las<br />
células logre asentarse allí y dé lugar a toda o parte<br />
.de una línea germinal. Sólo si las células germinales<br />
están afectadas se producirá un auténtico transgénico<br />
en la segunda generación.<br />
Este método se ha aplicado con éxito en ratones<br />
(41), pero en el resto de las especies animales es necesario<br />
el poder obtener líneas celulares totipotentes.<br />
Otros investigadores (30) han intentado conseguir<br />
quimeras con fibroblastos de cerdo, pero hasta la fecha<br />
no se ha publicado ningún trabajo de este tipo<br />
centrado en pequeños rumiantes.<br />
Utilización de vectores<br />
El planteamiento es muy similar al de la metodología<br />
de recombinación del ADN ya expuesta, en este<br />
caso se busca un sistema de transporte de los genes<br />
al interior del embrión en lugar del interior de la bacteria.<br />
a) Agentes virales<br />
La infección viral se ha utilizado repetidamente y<br />
con diversos fines para introducir ácidos nucleicos en<br />
cultivos celulares, y de la misma forma se pudo comprobar<br />
que la infección de embriones de ratón en estadio<br />
de cuatro-ocho células producía un individuo con<br />
una copia del virus en cada una de sus células (16).<br />
La Biología Molecular ha prestado las herramientas<br />
necesarias para poder manipular los virus, de tal forma<br />
que pueda eliminarse parte de su material genético,<br />
específicamente el causante de los efectos eitopáticos,<br />
y poner en su lugar un transgén de interés. Esta<br />
metodología cuenta con una serie de ventajas dignas<br />
de mención, se produce una integración muy eficiente<br />
de copias simples e intactas del gen, aunque no deja<br />
de ser una infección transmisible con los peligros que<br />
ello conlleva.<br />
La utilización de retrovirus es sin duda la modalidad<br />
más extendida, pero éstos tienen otro factor limitante,<br />
y es el tamaño del fragmento de material genético<br />
que puede adaptarse a la estructura viral. El límite<br />
máximo está en las 8 kilobases, lo que es un gen<br />
de pequeño tamaño si hablamos de individuos eucariotas<br />
(34).<br />
No cabe duda de que se trata de un terreno muy<br />
prometedor, más teniendo en cuenta que las inserciones<br />
virales parecen no producirse tan al azar como<br />
las de otras técnicas. En la actualidad muchos esfuer-<br />
Fig. 5.—Utilización de los espermatozoides como vectores de<br />
fragmentos de ADN para la producción de animales transgénicos.<br />
zos se encaminan a lograr vectores víricos que se<br />
inactiven en el momento en que hayan colocado el<br />
transgén en el genoma de la célula hospedadora, con<br />
lo que el peligro de infección viral desaparecería.<br />
b) Espermatozoides<br />
En 1989 se dieron a conocer los resultados de un<br />
grupo de investigadores (21) que habían logrado introducir<br />
material genético extraño en oocitos de ratón,<br />
utilizando para ello espermatozoides como vectores.<br />
Sus resultados igualaron los de la técnica de microinyección,<br />
que es la de mayor porcentaje de éxito<br />
hasta el momento (fig. 5).<br />
Básicamente la metodología consiste en la incubación<br />
de espermatozoides en un medio de capacitación<br />
al que se añade en la útlima media hora una solución<br />
de ADN, de tal forma que las células espermáticas<br />
captan el ácido nucleico justo antes de ser enfrentadas<br />
con los oocitos durante un proceso de fertilización<br />
in vitro típico. No se han producido nuevas aportaciones<br />
con este planteamiento, pero de confirmarse los<br />
resultados, no cabe la menor duda de que sería un<br />
método ideal, ya que exige una infraestructura mucho<br />
menor que cualquiera de los otros sistemas disponibles<br />
hasta la fecha.<br />
Microinyección de ADN en pronúcleos y núcleos<br />
El único método que, hasta hoy, ha permitido obtener<br />
ovino transgénico consiste en la microinyección<br />
del material genético directamente en uno de los pronúcleos<br />
de'un zigoto o en ambos núcleos de un embrión<br />
de dos células (figs. 6 y 7).<br />
La microinyección de células eucariotas se describió<br />
en 1973 (8) y dos años después se aplicó con éxito<br />
en oocitos de rana (6). En embriones de mamífero se<br />
utilizó por primera vez en 1980 (12) y en 1985 se consiguieron<br />
los primeros cerdos, conejos y ovejas transgénicos<br />
(13).