Protein ? Disassembly im Verlauf der endosomalen Prozessierung
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Material und Methoden Seite 51<br />
Nach dem Pipettieren <strong>der</strong> Ansätze wurde für drei Stunden bei 37°C inkubiert. Die Reak-<br />
tion wurde Zugabe von 40 µl – Laemmli - Puffer gestoppt und die Proben gelelektropho-<br />
retisch aufgetrennt. Der Nachweis <strong>der</strong> proteolytischen Fragmente erfolgte durch Chemi-<br />
luminiszenz - Detektion bzw. Fluoreszenz nach dem Transfer <strong>der</strong> Fragmente auf PVDF -<br />
Membran.<br />
2.6 Durchführung <strong>der</strong> intrazellulären <strong>Prozessierung</strong> von<br />
markierten Antigenen<br />
Die für den Versuch eingesetzten dendritischen Zellen wurden aus GM-CSF - supple-<br />
mentierten Knochenmarkskulturen gewonnen. Die Zellen wurden für acht Tage in einer<br />
Dichte von 5x10 5 Zellen/ml Kulturmedium (DMEM, 5% FCS, 1% Gln, 2 ng rmGM-CSF)<br />
in Petrischalen kultiviert, die Zellernte erfolgte mit Versen. Knochenmarksmakrophagen<br />
wurden durch elftägige Kultur von Knochenmarkszellen in Gegenwart von M-CSF ge-<br />
wonnen. Die Zellen wurden in einer Dichte von 5x10 5 Zellen/ml Kulturmedium (DMEM,<br />
50% L929-Überstand, 5% FCS, 10% HS, 1% Gln) für elf Tage kultiviert und anschlie-<br />
ßend mit Versen geerntet. Die Knochenmarksmakrophagen wurden 72h vor Versuch-<br />
sende mit LPS bzw. γ- Interferon st<strong>im</strong>uliert. Die Zugabe von <strong>Protein</strong>aseinhibitoren erfolg-<br />
te 20h vor Versuchsende.<br />
Kontrolle Prot. + B Prot. + D Prot. + BD<br />
<strong>Protein</strong> 1 µl 1 µl 1 µl 1 µl<br />
Kathepsin B — 1 µl — 1 µl<br />
Kathepsin D — — 1 µl 1 µl<br />
DTT 1 µl 1 µl 1 µl 1 µl<br />
Puffer 38µl 37µl 37µl 36µl<br />
Tab. 8 Pipettierschema des In Vitro Verdau<br />
markierter <strong>Protein</strong>e<br />
Die Zellen wurden einem Tag vor <strong>der</strong> Antigenzugabe in einer Dichte von 5x10 5 Zellen/ml<br />
Kulturmedium bei DC´s bzw. 1x10 6 Zellen/ml Kulturmedium nach zwe<strong>im</strong>aligem Wa-<br />
schen in 24-Well-Kulturplatten eingesetzt. Die Zugabe des markierten Antigens erfolgte<br />
in einer Konzentration von 25 µg/ml Kulturmedium über einen Zeitraum von 5min bis<br />
zu 4h. Nach Ablauf <strong>der</strong> Inkubationszeit wurden die 24 Well- Platten bei 1200 U/min für<br />
15 min. abzentrifugiert und zwe<strong>im</strong>al mit PBS gewaschen. Nach sorgfältigem Entfernens<br />
des PBS wurde zu den Zellen die entsprechende Solubilisierungslösung gegeben. Nach<br />
einer mindestens halbstündigen Inkubation konnten die Zellen bis zur weiteren Verar-<br />
beitung bei -20°C gelagert werden.