Protein ? Disassembly im Verlauf der endosomalen Prozessierung
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Material und Methoden Seite 54<br />
Dichteeinheit bei 260nm entspricht 40 µg RNA pro ml. Während bei λ = 260nm vorwie-<br />
gend Nukleinsäuren absorbieren, zeigen <strong>Protein</strong>e eine Absorption bei λ = 280nm. Das<br />
Verhältnis <strong>der</strong> Absorption bei diesen beiden Wellenlängen erlaubt Aussagen über den<br />
Reinheitsgrad <strong>der</strong> RNA – Präparation: Der Quotient aus OD260 zu OD280 sollte 1,8 – 2,0<br />
betragen. Verunreinigungen mit <strong>Protein</strong>en lassen das Verhältnis kleiner werden.<br />
2.7.2 Gelelektrophoretische Auftrennung von Nukleinsäuren<br />
• TAE 50-fach 2 M Tris (242 g/l)<br />
50 mM EDTA<br />
5,71 % (v/v) Eisessig<br />
ad 100% Aqua bidest.<br />
• Trenngel 1 % (w/v) Agarose Type II (Sigma)<br />
2% (v/v) TAE 50-fach<br />
0,01% (v/v) Ethidiumbromidlösung<br />
ad 100% DEPC-H2O<br />
• Elektrophoresepuffer 2 % (v/v) TAE 50-fach<br />
ad 100% DEPC-H2O<br />
• Ladepuffer 50 % (w/v) Glyzerin<br />
1mMEDTA<br />
0,4 % (w/v) Bromphenolblau<br />
0,4 % (w/v) Xylencyanol<br />
• Gelträger<br />
• Probenkamm<br />
• Elektrophoresekammer DNA-Mini-Sub-Cell (Bio-Rad)<br />
Zur Herstellung des Agarose – Trenngels wurde die Agarose in DEPC-H2O durch Aufko-<br />
chen in <strong>der</strong> Mikrowelle gelöst. Nach Abkühlen <strong>der</strong> Lösung auf ca. 60°C wurden die üb-<br />
rigen Gelkomponenten zugesetzt, gemischt und in einen vorbereiteten Gelträger gefüllt.<br />
Mit einem Kunststoffkamm wurden Startkanäle für die Nukleinsäure - Proben ausge-<br />
spart. Das Gel wurde nach dem Erkalten in eine Elektrophoresekammer überführt, die<br />
mit Elektrophoresepuffer gefüllt wurde, bis das Gel etwa 1mm bedeckt war. Die zu un-<br />
tersuchende Probe wurde mit 1µl Ladepuffer versetzt, mit DEPC-H2O auf10µlaufgefüllt<br />
und in die Probentaschen pipettiert. Die Elektrophorese erfolgte bei 100V, bis <strong>der</strong> Farb-<br />
marker das Gelende erreicht hatte.