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Protein ? Disassembly im Verlauf der endosomalen Prozessierung

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Ergebnisse Seite 83<br />

<strong>Protein</strong>asen inhibiert. Durch den Einsatz von EDTA werden zudem die Metalloproteasen<br />

inhibiert. Für die weiteren Versuche wurde bei <strong>der</strong> Solubilisierung <strong>der</strong> Zellen stets <strong>der</strong><br />

<strong>Protein</strong>ase – Inhibitor Cocktail Complete eingesetzt. Zusammenfassend ergibt sich durch<br />

den Einsatz des nichtionischen Detergens Triton X 100 mit dem Inhibitor- Cocktail<br />

Complete <strong>der</strong> opt<strong>im</strong>ale Solubilisierungspuffer für die weiteren Versuche. Die opt<strong>im</strong>ale<br />

Zellzahl liegt bei 1x10 6 Zellen.<br />

Für die Trennung <strong>der</strong> Zellsolubilisate in <strong>der</strong> SDS – PAGE wurden Tricin – Gele eingesetzt<br />

[93]. Diese boten gegenüber den herkömmlichen Glycin – Gelen nach Laemmli [92] den<br />

Vorteil <strong>der</strong> höheren Auflösung <strong>im</strong> Molekulargewichtsbereich von 1-100 kD. Nachteilig ist<br />

jedoch die geringere Schärfe <strong>der</strong> Banden. Zudem sind die Gele sehr empfindlich gegen-<br />

über hohen Salzkonzentrationen <strong>im</strong> Probenpuffer. Für die Kinetikanalysen wurde <strong>der</strong><br />

direkte Fluoreszenz – Nachweis gewählt, da so densiometrische Auswertungen möglich<br />

waren. Die verwendete CCD – Kamera verfügt über eine lineare Kennlinie, während<br />

Röntgenfilme eine exponentielle Kennlinie haben. Da das vorhandene Imagingsystem je-<br />

doch nur eine begrenzte Auflösung hat, wurde aus drucktechnischen Gründen bei den<br />

Kinetikexper<strong>im</strong>enten auf eine Darstellung <strong>der</strong> SDS – Gele weitgehend verzichtet.<br />

Diese ersten Exper<strong>im</strong>ente zeigten, dass mit dem gewählten Exper<strong>im</strong>entalansatz in<br />

KMM∅ generierte Abbaufragmente von FITC-OVA in <strong>der</strong> SDS – PAGE getrennt werden<br />

können und durch Fluoreszenzaktivierung nachgewiesen werden können. Dabei zeigte<br />

sich nach einem vierstündigen FITC-OVA Pulse bereits ein Abbaufragment mit einem<br />

Molekulargewicht von 40 kD.<br />

3.1.8 Kinetik <strong>der</strong> Antigenprozessierung durch Knochenmarksmakrophagen<br />

Um ein grundlegendes Verständnis über die dynamischen Prozesse <strong>der</strong> Antigenprozes-<br />

sierung zu erhalten, wurden Kinetikexper<strong>im</strong>ente durchgeführt. Mit Hilfe dieser Experi-<br />

mente sollte geklärt werden, in welchem Zeitraum das Modellantigen FITC - Ovalbumin<br />

durch intrazelluläre <strong>Protein</strong>asen degradiert wird. Durch diese Information könnte <strong>der</strong><br />

Ort <strong>der</strong> <strong>Prozessierung</strong> innerhalb des Endo-/lysosomalen Apparates angenähert werden.<br />

Grundlegende Arbeiten über die Endozytose zeigten eine klare Korrelation zwischen dem<br />

Aufenthalt in best<strong>im</strong>mten intrazellulären Kompart<strong>im</strong>enten und <strong>der</strong> Zeit seit Aufnahme<br />

des Antigens[125]. Zusätzlich wurde <strong>der</strong> Einfluss <strong>der</strong> Makrophagenaktivierung auf die<br />

<strong>Prozessierung</strong> untersucht. Hierzu wurden die Knochenmarksmakrophagen einerseits mit<br />

γ- Interferon, an<strong>der</strong>erseits mit dem bakteriellen Oberflächenantigen LPS st<strong>im</strong>uliert.

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