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Protein ? Disassembly im Verlauf der endosomalen Prozessierung

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Ergebnisse Seite 74<br />

Abb. 13 Enzymatische in vitro Verdauung von FITCmarkiertem<br />

Ovalbumin<br />

Es wurden 1µg FITC-OVA mit 1µg Kathepsin B und/o<strong>der</strong> 1µg Kathepsin D für 4h bei<br />

37°C in einem Endvolumen von 40µl enzymatisch verdaut. Nach Ablauf <strong>der</strong><br />

Reaktionszeit wurden die Proben kurz abzentrifugiert, mit Laemmli- Puffer versetzt und in<br />

<strong>der</strong> 1D-SDS- PAGE aufgetrennt. Der Nachweis erfolgte durch Fluoreszenz- Aktivierung.<br />

A= FITC-OVA, B= FITC-OVA + KAT B, C= FITC-OVA+KAT D, D= FITC-OVA+KAT D+B<br />

bei pH 5,9. A´,B´,C´,D´ bei pH 4,6.<br />

Der Verdau von FITC- Ovalbumin mit den <strong>Protein</strong>asen Kathepsin B und D zeigt das be-<br />

reits aus <strong>der</strong> Diplomarbeit bekannte Abbaumuster, welches auch mit DIG- und Biotin -<br />

markiertem Ovalbumin erhalten wurde [121]. Unterschiede in den Molekulargewichten<br />

<strong>der</strong> erhaltenen Banden lassen sich mit dem unterschiedlichen Molekulargewicht des<br />

Markierungsrestes erklären.<br />

3.1.4 2D – Analyse von enzymatisch abgebauten FITC- Ovalbumin<br />

Um vergleichen zu können, ob das in den Zellen verdaute Ovalbumin die gleichen Frag-<br />

mente ergibt wie das in vitro enzymatisch abgebaute Molekül, wurden die Ansätze zwei-<br />

d<strong>im</strong>ensional aufgetrennt (Abb. 14 A-D). Hierdurch wird neben dem Molekulargewicht<br />

<strong>der</strong> isoelektrische Punkt als zweiter Messparameter eingeführt. Diese hochauflösende<br />

Methode erleichtert die Identifikation von gleichen Peptiden mittels Gelelektrophorese.

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