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propiedades estructurales y funcionales de preparados proteicos de ...

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Capítulo2: Hidrólisis enzimática <strong>de</strong> aislados <strong>proteicos</strong> <strong>de</strong> amaranto<br />

cantidad <strong>de</strong> zonas hidrofóbicas que se expusieron hacia al exterior <strong>de</strong> la<br />

estructura proteica por el sometimiento <strong>de</strong> las proteínas a las condiciones ácidas<br />

<strong>de</strong> pH. Otra causa pue<strong>de</strong> <strong>de</strong>berse a la interacción <strong>de</strong> grupos sulfhidrilo para<br />

pasar a formar puentes disulfuro al entrar en contacto íntimo en la interfase. Es<br />

necesario que estos grupos sulfhidrilo no formaran parte <strong>de</strong> puentes disulfuro<br />

para que puedan reaccionar. Castellani, Martínez y col. (1999) informaron en las<br />

globulinas <strong>de</strong> amaranto la existencia <strong>de</strong> grupos sulfhidrilos libres que se<br />

encuentran ocultos hacia el interior <strong>de</strong> la estructura. Estos pudieron haberse<br />

expuesto por la <strong>de</strong>snaturalización proteica ocurrida a pH ácido según muestran<br />

los valores <strong>de</strong> entalpías <strong>de</strong> DSC <strong>de</strong> la Tabla 1.1 <strong>de</strong> la sección 1.2.1.1. (AN pH 2,0 y<br />

AN pH 8,0). Se <strong>de</strong>be tener en cuenta que la formación <strong>de</strong> puentes disulfuro a pH<br />

2,0 es más lenta pero sin embargo pue<strong>de</strong> darse, y la probabilidad <strong>de</strong> que se<br />

formen aumenta por la alta concentración <strong>de</strong> proteína que se da en la interfase<br />

(Darby y Creighton 1995).<br />

A pH 8,0 muchas <strong>de</strong> las zonas hidrofóbicas se encuentran ocultas hacia el interior<br />

<strong>de</strong> la estructura globular <strong>de</strong> las proteínas evitando el agua <strong>de</strong>l medio. Aunque las<br />

proteínas sufran un cambio conformacional o <strong>de</strong>snaturalización parcial cuando<br />

se adsorben en la interfase, ese cambio normalmente se produce muy lentamente<br />

en una proteína globular porque para producirlo tiene que atravesar una barrera<br />

energética gran<strong>de</strong> (Dickinson, Rolfe y col. 1990; McClements, Monahan y col.<br />

1993). En cambio con la <strong>de</strong>snaturalización producida a pH 2,0 se abrió la<br />

estructura. Estos aumentos en los módulos <strong>de</strong> viscoelasticidad <strong>de</strong>l film pue<strong>de</strong>n<br />

resultar en un incremento <strong>de</strong> la resistencia <strong>de</strong> la película interfacial y a la<br />

coalescencia (Izmailova, Yampolskaya y col. 1999; Maldonado-Val<strong>de</strong>rrama,<br />

Martín-Rodriguez y col. 2008).<br />

Si comparamos las muestras a cada uno <strong>de</strong> los pH, se pue<strong>de</strong> advertir que<br />

mientras a pH 2,0 AI presenta un módulo interfacial mayor que las otras<br />

muestras, a pH 8,0, su módulo es menor. Evi<strong>de</strong>ntemente, el hecho <strong>de</strong> no haber<br />

sufrido hidrólisis hace que a pH 8,0 muestre en los tiempos <strong>de</strong>l ensayo valores <strong>de</strong><br />

módulo interfacial menores que con las muestras hidrolizadas. Probablemente<br />

los cambios conformacionales para aumentar el número <strong>de</strong> interacciones entre<br />

moléculas y así darle más rigi<strong>de</strong>z al film son más lentos que con las muestras que<br />

sufrieron hidrólisis <strong>de</strong>bido a la mayor estructuración que presentarían las<br />

proteínas en el caso <strong>de</strong> AI. Es razonable suponer que si los tiempos ensayados<br />

hubiesen sido mayores el valor <strong>de</strong>l módulo hubiera sido similar a los <strong>de</strong> las otras<br />

muestras. En cambio cuando AI se encuentra a pH 2,0, las proteínas sufren<br />

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