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propiedades estructurales y funcionales de preparados proteicos de ...

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Capítulo 1: Tratamiento ácido <strong>de</strong> aislados <strong>de</strong> soja y amaranto<br />

las albúminas. Esto probablemente podría <strong>de</strong>berse a una difusión <strong>de</strong> dichos<br />

polipéptidos al medio cuando el gel fue sumergido en el buffer <strong>de</strong> tratamiento<br />

(sección 1.1.6.6.).<br />

SN, AN y una mezcla que contiene cantida<strong>de</strong>s iguales <strong>de</strong> ambos aislados (MN)<br />

suspendidas en buffer A, fueron separados mediante cromatografías <strong>de</strong><br />

exclusión molecular. Las fracciones colectadas <strong>de</strong> los diferentes picos <strong>de</strong> los<br />

cromatogramas fueron analizadas mediante SDS-PAGE en condiciones<br />

reductoras para i<strong>de</strong>ntificar las especies proteicas que contribuían a cada uno <strong>de</strong><br />

ellos. Los resultados obtenidos se muestran en la Figura 1.11. (a), (b) y (c). En el<br />

caso <strong>de</strong> SN (Figura 1.11.(a)) los picos indicados como 1, 2, 3 y 4 están compuestos<br />

principalmente por polipéptidos pertenecientes a las globulinas 7 y 11S. En el<br />

pico número 5, que muestra valores <strong>de</strong> absorbancia mayores, se pue<strong>de</strong> observar<br />

la presencia muy tenue <strong>de</strong>l polipéptido β <strong>de</strong> β-conglicinina (7S) y <strong>de</strong> los<br />

polipéptidos A y B <strong>de</strong> la glicinina (11S). En las calles correspondientes a los picos<br />

7 y 8 se <strong>de</strong>tectó principalmente el polipéptido B <strong>de</strong> 11S. Las calles 9, 10 y 11 no<br />

presentaron bandas, ello pue<strong>de</strong> ser <strong>de</strong>bido al hecho que el tamaño molecular <strong>de</strong><br />

las especies presentes sea <strong>de</strong>masiado pequeño para ser retenidas en el gel y/o que<br />

la concentración proteica fue muy baja como para ser <strong>de</strong>tectada. En el caso <strong>de</strong><br />

AN (Figura 1.11.(b)) al primer pico <strong>de</strong>l cromatograma contribuyen polipéptidos<br />

pertenecientes a las globulinas P y 11S. A partir <strong>de</strong>l pico número 2 se comienza a<br />

observar la banda L <strong>de</strong> 43 kDa perteneciente a la proteína minoritaria 7S <strong>de</strong><br />

amaranto, que se ve más <strong>de</strong>finida en la calle <strong>de</strong>l gel correspondiente al pico 3.<br />

También a este pico contribuyen polipéptidos <strong>de</strong> peso molecular menor a 20 kDa<br />

pertenecientes a la fracción albúminas. En el pico 4 aparecen sólo albúminas <strong>de</strong><br />

bajo peso molecular y el polipéptido B2 perteneciente a la globulina 11S mientras<br />

que en los picos 5 y 6, que constituyen los picos mayoritarios <strong>de</strong>l cromatograma<br />

en términos <strong>de</strong> absorbancia a 280 nm, se <strong>de</strong>tectan albúminas <strong>de</strong> masa molecular<br />

cada vez más pequeña. Las especies proteicas que se separan en los picos 7 y 8 no<br />

pudieron i<strong>de</strong>ntificarse en las electroforesis probablemente por las razones<br />

indicadas previamente. El perfil electroforético <strong>de</strong> MN (Figura 1.11.(c)) es<br />

intermedio entre los cromatogramas <strong>de</strong> SN y AN. Se pue<strong>de</strong> ver en las<br />

electroforesis que los primeros picos correspon<strong>de</strong>n a las globulinas <strong>de</strong> soja y en<br />

menor medida a las <strong>de</strong> amaranto. En los picos 4 y 5 se <strong>de</strong>tectan principalmente<br />

11S <strong>de</strong> soja y globulinas <strong>de</strong> amaranto. En el pico 6 se observan tenuemente<br />

polipéptidos <strong>de</strong> tipo B correspondientes a la 11S <strong>de</strong> soja y <strong>de</strong> amaranto mientras<br />

que al pico 7 contribuyen albúminas <strong>de</strong> amaranto. Los picos 8 y 9 no quedan<br />

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