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4 Größenansätze 49<br />
≤ 0,05, d. h. die Verteilung bezüglich der Radien ist trotz der Tensidüberstrukturen<br />
relativ eng.<br />
Die AFFFF-Elugramme für die Probe T2,5b/s sind in Abbildung 4.3 gezeigt. Auch<br />
in diesem System läßt sich durch sequentielles Zudosieren des Monomers das<br />
Größenwachstum der Partikel mittels AFFFF verfolgen; die Partikelradien wachsen<br />
gleichmäßig mit der Monomerzugabe an. Bei der 1 g-Probe sind die Teilchen so<br />
klein, daß das Signal vollständig im Void-Peak verschwindet.<br />
UV / a.u.<br />
0,012<br />
0,010<br />
0,008<br />
0,006<br />
0,004<br />
0,002<br />
0,000<br />
2 4 6 8 10 12 14<br />
R / nm<br />
h<br />
Abb. 4.3: AFFFF-Elugramme der wäßrigen Dispersionen der Probe T2,5b/s,<br />
Verdünnung bis 5 g T 1:10, danach 1:20 mit FFF-Laufmittel, 1 g (——), 2 g (– – –),<br />
3 g (∙ ∙ ∙ ∙ ∙), 4 g (–∙–∙–), 5 g (–∙∙–∙∙), 10 g (- - - -), 15 g (∙∙∙∙∙∙∙), 20 g (-∙-∙-∙), 25 g (——) T<br />
Wie in Kapitel 3 bereits beschrieben, besteht eine Abhängigkeit zwischen der<br />
Teilchengröße und dem Flottenverhältnis, wobei die Partikel bei Vergrößerung des<br />
Flottenverhältnisses kleiner werden, da mehr Tensid zur Stabilisierung zur Verfügung<br />
steht. Ein Vergleich der Teilchenradien der Proben T1,5b/s und T2,5b/s zeigt von<br />
Beginn des Zudosierens an im System mit 2,5 g Tensid kleinere Teilchen, was sich<br />
über den gesamten Bereich der Monomerzugabe fortsetzt.<br />
Eine Gegenüberstellung der Ergebnisse aus AFFFF (wiederum zwei Ansätze<br />
zum Überprüfen der Reproduzierbarkeit) und DLS (1. Ansatz) enthält Abbildung 4.4,<br />
wobei die DLS-Werte für die Proben 1,1 – 5,3 mL die der separierten Abklingfunktion<br />
der µ-Gelteilchen sind und die für die Proben 10,5 – 26,3 mL die Werte für beide<br />
Relaxationen, da die beiden Funktionen nicht mehr getrennt angepaßt werden