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Periodoncia.Eley.6a.Ed

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Pruebas diagnósticas de actividad de la enfermedad periodontal 183<br />

Se ha demostrado que el número de espiroquetas y bacterias móviles predice<br />

la pérdida de inserción periodontal futura, en la observación prospectiva<br />

durante 1 año de pacientes bajo mantenimiento después del tratamiento<br />

periodontal, cuando no se realiza ningún tratamiento durante el período en el<br />

que se realizó el test (Listgarten y Levin, 1981). Sin embargo, no se encontró<br />

valor predictivo cuando los pacientes fueron sometidos a raspado cada 3<br />

meses durante un estudio de 3 años (Listgarten et al., 1986). Además, cuando<br />

A. actinomycetemcomitans, P. gingivalis y Prevotella intermedia fueron probados<br />

como predictores de pérdida de inserción periodontal futura en un<br />

estudio similar durante 3 años con pacientes bajo mantenimiento regular, no<br />

se demostró ningún potencial diagnóstico (Listgarten et al., 1991).<br />

El número de especies bacterianas se puede determinar de diversas formas<br />

(Listgarten, 1992), entre ellas las que escribimos a continuación.<br />

Microscopia de campo oscuro o con contraste de fase<br />

La ventaja principal de estas técnicas es la capacidad de contar todas las bacterias<br />

presentes en la muestra. El inconveniente principal radica en la incapacidad<br />

de determinar la especie de los microorganismos. Sin embargo, los<br />

estudios que han utilizado estas técnicas han demostrado que en la encía sana<br />

existe una flora subgingival normal de cocos y bacilos no móviles, mientras<br />

que en la gingivitis aparecen bacilos móviles y espiroquetas y en la periodontitis<br />

aumentan mucho esos morfotipos, en particular las espiroquetas<br />

(Listgarten y Levin, 1981; Listgarten, 1986).<br />

Técnicas de cultivo<br />

Esas técnicas son capaces de analizar la naturaleza de los microorganismos<br />

presentes en una muestra, puesto que se pueden determinar las especies con<br />

diversos métodos de laboratorio, entre ellos subcultivos selectivos, pruebas<br />

bioquímicas, SDS PAGE (electroforesis en gel de poliacrilamida), sondas<br />

genéticas, ribotipación, huella digital de ADN y análisis de los ácidos grasos<br />

de cadena larga de la pared celular (Genco et al., 1986; Greenstein, 1988). Sin<br />

embargo, no todas las bacterias se pueden cultivar con facilidad y no es probable<br />

que la obtención proporcional de especies cultivables sea similar a sus<br />

proporciones en la bolsa periodontal. Además, el empleo de medios selectivos<br />

limitará las especies que pueden proliferar (Mandell y Socransky, 1981).<br />

Análisis inmunológicos<br />

El uso de técnicas inmunológicas como la inmunofluorescencia (Zambon et al.,<br />

1985b; Zambon et al., 1986) o el ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas<br />

(ELISA) (Ebersole et al., 1984) permite detectar especies bacterianas individuales.<br />

Esos métodos se han mostrado útiles para detectar la presencia y las proporciones<br />

relativas de especies bacterianas seleccionadas. Estas técnicas emplean<br />

anticuerpos específicos que se unen a antígenos bacterianos seleccionados y son<br />

detectados después mediante marcado de los anticuerpos primarios directamente<br />

con un marcador fluorescente (inmunofluorescencia directa) (fig. 14.2A)<br />

o con un anticuerpo secundario fluorescente (inmunofluorescencia indirecta)<br />

Fig. 14.2 El esquema muestra las bases de: (arriba)<br />

inmunofluorescencia directa, (centro) ensayos por<br />

inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA) (izquierda);<br />

ELISA indirecto (centro); con anticuerpo terciario o detector<br />

(derecha) y (abajo) inmunofluorescencia indirecta utilizando<br />

un anticuerpo secundario. En las técnicas ELISA, el anticuerpo<br />

detector es ligado a una enzima, usualmente peroxidasa del<br />

rábano o fosfatasa alcalina, que cataliza una reacción en<br />

cadena generadora del color.<br />

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