Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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5.4 Präparation von rekombinantem hAgo2 und hTRBP<br />
5.4 Präparation von rekombinantem hAgo2 und hTRBP 2<br />
Als Voraussetzung für die meisten <strong>der</strong> geplanten biochemischen Studien war eine Präparation<br />
<strong>der</strong> Zielproteine mit möglichst hohem Reinheitsgrad sowie <strong>der</strong> Entfernung stören<strong>der</strong> Faktoren<br />
wie Nukleasen o<strong>der</strong> inhibieren<strong>der</strong> Chemikalien unabdingbar. Dies stellte vor allem für<br />
die Gewinnung von rekombinantem hAgo2 eine groÿe Hürde dar. Zwar sind bereits Reinigungsprotokolle<br />
für bakteriell exprimiertes rekombinantes hAgo2 in <strong>der</strong> Literatur beschrieben<br />
[62, 255], jedoch konnten mit den publizierten Strategien keine groÿen Ausbeuten erzielt werden.<br />
Strategien wie die Isolierung aus Säuger- [79] o<strong>der</strong> Insektenzellen [199, 256] stellten auf<br />
Grund zu geringer Ausbeuten o<strong>der</strong> <strong>der</strong> Koisolierung weiterer Proteine ebenfalls keine Alternative<br />
dar. Aus diesen Gründen wurden, teilweise parallel, Erkenntnisse aus den verschiedenen<br />
Reinigungsstrategien, die sich durch die Verwendung <strong>der</strong> unterschiedlichen Konstrukte (siehe<br />
Abbildung 5.1) ergaben, gewonnen und miteinan<strong>der</strong> kombiniert.<br />
5.4.1 Studien zur Reinigung von NHA-hAgo2, hAgo2-His und His-hAgo2<br />
Präparation aus inclusion bodies unter denaturierenden Bedingungen<br />
Die Überexpression von rekombinanten Proteinen führt häug zur Aggregatbildung in den<br />
Bakterienzellen. Die Aggregate o<strong>der</strong> inclusion bodies (Einschlusskörperchen) bestehen v. a.<br />
aus nicht nativ gefalteten Proteinen, was einen Vorteil für die Reinheit <strong>der</strong> aus den inclusion<br />
bodies isolierten Proteinen darstellt. Der Nachteil besteht jedoch darin, dass die biologische<br />
Funktion des Proteins durch seine Rückfaltung wie<strong>der</strong>hergestellt werden muss.<br />
Als Basis für die Reinigung von hAgo2 unter denaturierenden Bedingungen ohne Verwendung<br />
einer Anitätsmarkierung wurde das bereits bestehende Protokoll für NHA-hAgo2 verwendet<br />
und auf die Konstrukte hAgo2-His und His-hAgo2 übertragen (siehe Abbildung 5.6).<br />
Durch die Behandlung mit Lysozym, DNaseI und Detergenz wurden die Einschlusskörperchen<br />
weitgehend von den Zelltrümmern und gelösten Bakterienproteinen getrennt. Nach<br />
stringentem Waschen konnte das Zielprotein im Fall von NHA-hAgo2 und His-hAgo2 quantitativ<br />
resolubilisiert werden. Die Rückfaltung erbrachte partiell gereinigtes, lösliches hAgo2,<br />
dessen enzymatische Aktivität bestätigt werden konnte (siehe Abschnitt 5.5.2). Die Ausbeute<br />
betrug für NHA-hAgo2 7,1 mg pro g Bakterienzellen (NI), für hAgo2-His 13,7 mg pro g<br />
Bakterienzellen (NI) und für His-hAgo2 31,7 mg pro g Bakterienzellen (A 280 ).<br />
2 Die in Abschnitt 5.4 beschriebenen Experimente wurden teilweise in Zusammenarbeit mit S. Weiÿbach und<br />
J. Blank im Rahmen <strong>der</strong> Betreuung ihrer Bachelorarbeiten sowie A. Roth im Rahmen <strong>der</strong> Betreuung ihres<br />
studentischen Praktikums durchgeführt.<br />
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