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Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...

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5 Ergebnisse<br />

FAM<br />

P<br />

BHQ<br />

2h<br />

25°C<br />

FAM<br />

P<br />

BHQ<br />

+<br />

100 x<br />

3h<br />

25°C<br />

FAM<br />

P<br />

+<br />

+<br />

BHQ<br />

Abbildung 5.41: Schema des experimentellen Aufbaus zur Untersuchung <strong>der</strong> Produktfreisetzung<br />

nach target RNA-Spaltung durch hAgo2. Nach schrittweiser Assemblierung von binärem und ternärem<br />

Komplex unter Beobachtung <strong>der</strong> jeweiligen Fluoreszenzabnahme kam es zur Bildung von target<br />

RNA-Spaltprodukten. Durch Zugabe von 100-fachem Überschuss guide RNA zur Kompetition des<br />

binären Komplexes wurden die aus dem ternären Komplex dissoziierenden Spaltprodukte gebunden.<br />

Der Prozess konnte anhand <strong>der</strong> Signalzunahme bei räumlicher Trennung von Fluorophor FAM und<br />

Fluoreszenzlöscher BHQ beobachtet werden. Für Sequenzen siehe Abschnitt 3.8.2.<br />

Die Ratenkonstanten aller Reaktionen sind gleich, weshalb angenommen werden kann, dass<br />

die Spaltungsreaktionen nach demselben Mechanismus ablaufen.<br />

Es muss bei <strong>der</strong> Messung <strong>der</strong> Reaktionsgeschwindigkeit <strong>der</strong> Produktfreisetzung also davon<br />

ausgegangen werden, dass zwei Populationen von ternären Komplexen vorliegen: solche, die<br />

aus GST-hAgo2, guide RNA und gespaltener target RNA bestehen und solche, bei denen keine<br />

target RNA-Spaltung erfolgt ist (siehe Abschnitt 5.10.2). Dieser Sachverhalt würde allerdings<br />

auch im Fall einer vollständigen target RNA-Spaltung gelten, da die Dissoziation <strong>der</strong> Spaltprodukte<br />

bereits während <strong>der</strong> Spaltungsreaktion auftritt und unter den vorliegenden multiple<br />

turnover Bedingungen neue target RNA von den binären Komplexen gebunden wird.<br />

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