Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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6 Diskussion<br />
Abbildung 2.7). Zu diesen vier Teilprozessen wurden quantitative biochemische und kinetische<br />
Analysen durchgeführt. Mittels Protein/RNA-Bindungsstudien wurden Substratbindungsparameter<br />
wie die Anität von hAgo2 für <strong>siRNA</strong> bzw. die Anität des binären Komplexes zur<br />
target RNA gemessen. Die Bindungsreaktionen wurden anschlieÿend in Bezug auf die Anzahl<br />
<strong>der</strong> Phasen charakterisiert sowie die Assoziations- und Dissoziationsgeschwindigkeitskonstanten<br />
bestimmt. Die sequenzspezische target RNA-Spaltung durch hAgo2 wurde untersucht<br />
und schlieÿlich die Freisetzung <strong>der</strong> Spaltprodukte charakterisiert. Mit Hilfe <strong>der</strong> experimentell<br />
ermittelten Parameter wurde ein minimales kinetisches Modell <strong>der</strong> <strong>siRNA</strong>-abhängigen<br />
hAgo2-<strong>vermittelten</strong> target RNA-Spaltung etabliert. Im Folgenden werden die Ergebnisse <strong>der</strong><br />
Untersuchungen zu den einzelnen Teilprozessen diskutiert.<br />
6.3.1 Die Beladung von hAgo2 mit <strong>siRNA</strong> ist abhängig von <strong>der</strong><br />
Beschaenheit des 5'-Endes des guide Stranges<br />
Als erster <strong>der</strong> vier oben beschriebenen Teilprozesse wurde die Beladung von hAgo2 mit drei<br />
verschiedenen <strong>siRNA</strong>-Substraten untersucht. Während dieses Schrittes wird hAgo2 programmiert.<br />
Da die <strong>Erkennung</strong> und Spaltung <strong>der</strong> target RNA in Abhängigkeit des guide Stranges<br />
vollzogen wird, ist die initiale Beladung von hAgo2 von grundlegen<strong>der</strong> Bedeutung für die<br />
RNAi.<br />
Die kleinen regulatorischen <strong>siRNA</strong>s und miRNAs teilen im zellulären Kontext drei Eigenschaften:<br />
Sie sind etwa 19 25 nt lang. Auÿerdem tragen ihre 5'-Enden eine Phosphatgruppe<br />
und ihre 3'-Enden weisen jeweils einen Überhang von 2 nt Länge auf [3033]. Bislang wurde angenommen,<br />
dass rekombinantes hAgo2 in vitro im Gegensatz zum RISC innerhalb einer Zelle<br />
o<strong>der</strong> bei Verwendung von Zellextrakt nur durch eine einzelsträngige guide RNA programmierbar<br />
ist [35, 199]. Basierend auf diesen Eigenschaften wurden drei <strong>siRNA</strong>-Substrate gewählt,<br />
um mechanistische Einsicht in die Beladung von rekombinantem hAgo2 zu erhalten. Alle drei<br />
Substrate trugen aus experimentellen Gründen eine FAM-Markierung an Nukleotid 14 des<br />
jeweiligen guide Stranges. Bei den <strong>siRNA</strong>s handelte es sich um den am 5'-Ende phosphorylierten<br />
guide Strang P-as2B-FAM, den sequenzidentischen, unphosphorylierten guide Strang<br />
OH-as2B-FAM sowie die doppelsträngige <strong>siRNA</strong> P-si2B-FAM, welche aus P-as2B-FAM und<br />
dem komplementären Gegenstrang s2B besteht und <strong>der</strong>art hybridisiert ist, dass an den 3'-<br />
Enden je zwei 2 nt lange Überhänge existieren (siehe Abschnitt 3.8.2 und Abbildung 5.22).<br />
hAgo2 zeigt eine Präferenz für einzelsträngige, am 5'-Ende phosphorylierte RNA<br />
Die Messung <strong>der</strong> Gleichgewichts-Dissoziationskonstanten für einen Komplex aus GST-hAgo2<br />
und P-as2B-FAM enthüllte eine hohe Anität des Proteins zu einem am 5'-Ende phosphorylierten<br />
guide Strang (K d = 7,1 nM). In <strong>der</strong> Literatur sind bereits einige K d s für vergleichbare<br />
Komplexe beschrieben [199, 260]. Der in dieser Arbeit ermittelte Wert ist mit diesen teilweise<br />
gut vergleichbar (siehe Tabelle 6.1). Die Abweichungen könnten auf die Verwendung<br />
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