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Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...

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% Umsatz<br />

5.12 Untersuchung des Einusses von hTRBP auf die <strong>siRNA</strong>-vermittelte targetRNA-Spaltung<br />

A<br />

+ + + +<br />

- - - -<br />

+ + + +<br />

+ + + +<br />

+ + + +<br />

+ + + +<br />

+ + + +<br />

+ + + +<br />

GST<br />

+ +<br />

+ +<br />

+ +<br />

- -<br />

+ +<br />

- -<br />

+ +<br />

- -<br />

hAgo2<br />

GST-hAgo2<br />

hTRBP-His<br />

target RNA<br />

<strong>siRNA</strong><br />

t (min)<br />

21 nt<br />

s2B<br />

B<br />

60<br />

50<br />

40<br />

mit TRBP<br />

ohne TRBP<br />

30<br />

20<br />

11nt<br />

7nt<br />

10<br />

5’-<br />

Spaltprodukt(e)<br />

0<br />

0 2000 4000 6000 8000<br />

Zeit (s)<br />

Abbildung 5.48: Einuss von hTRBP-His auf die Spaltungsaktivität von GST-hAgo2 nach seiner<br />

Programmierung mit doppelsträngiger <strong>siRNA</strong> (siehe Abschnitt 4.4.1). (A) Modizierter Spaltungsassay<br />

mit 3,7 µM GST-hAgo2, 100 nM P-si2B und 2,5 nM s2B. In einem Ansatz erfolgte die Präinkubation<br />

von <strong>siRNA</strong> und 3,7 µM hTRBP-His für 8 min bei 25 ◦ C, bevor target RNA und GST-hAgo2 zugegeben<br />

wurden. Der an<strong>der</strong>e Ansatz wurde in Abwesenheit von hTRBP-His präinkubiert. Es folgten eine Auftrennung<br />

durch denaturierende PAGE und Detektion mittels Autoradiographie. Als Kontrolle wurde<br />

target RNA mit GST-hAgo2 und hTRBP-His gleichzeitig o<strong>der</strong> nur mit GST-hAgo2 ohne <strong>siRNA</strong> inkubiert.<br />

(B) Die ermittelten Umsätze wurden gegen die Zeit aufgetragen und die korrespondierenden Raten<br />

(k -hTRBP-His = 0,0002 (± 0,00006) s -1 bzw. k +hTRBP-His = 0,0012 (± 0,00006) s -1 ) und die maximalen<br />

Umsätze (max. Umsatz -hTRBP-His = 25,6 (± 0,04) % bzw. max. Umsatz +hTRBP-His = 41,2 (± 0,32) %)<br />

durch Anpassung <strong>der</strong> experimentellen Daten an eine einfach exponentielle Gleichung ermittelt. T1:<br />

durch T1-Verdauung hergestellter Gröÿenmarker. t: Zeit.<br />

Banden höherer elektrophoretischer Mobilität. Dies muss auf die Anwesenheit von hTRBP-<br />

His zurückzuführen sein. Die Proteinpräparation enthält eine Nuklease-Verunreinigung, wie<br />

ein Kontrollansatz zeigt. Dadurch kann es zu einer Verkürzung <strong>der</strong> <strong>siRNA</strong> vor <strong>der</strong> Ladung<br />

auf hAgo2 gekommen sein, wodurch sich die Spaltstelle innerhalb <strong>der</strong> Sequenz verschiebt.<br />

Da auch die target RNA während <strong>der</strong> Inkubationszeit teilweise hAgo2-unabhängig degradiert<br />

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