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Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...

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Mass (%)<br />

5 Ergebnisse<br />

NHA<br />

hAgo2<br />

90<br />

80<br />

1<br />

70<br />

60<br />

50<br />

40<br />

30<br />

20<br />

10<br />

2<br />

3<br />

0<br />

0,1 1 10 100 1000<br />

Rh (nm)<br />

Population<br />

R h<br />

(nm)<br />

Pd<br />

(%)<br />

MW-R<br />

(kDa)<br />

Mass<br />

(%)<br />

1 7,6 0,0 391 79,4<br />

2 24,7 11,7 6099 19,8<br />

3 89,5 15,2 124022 0,8<br />

Abbildung 5.15: Regularisierungs-Histogramm <strong>der</strong> Dynamischen Lichtstreuung durch 24,1 µM NHAhAgo2<br />

in Rückfaltungspuer (siehe Abschnitt 4.4.5). Die Messung wurde bei 25 ◦ C durchgeführt. Die<br />

unterschiedliche Breite <strong>der</strong> Balken im Histogramm erklärt sich durch die logarithmische Abszissenachse.<br />

Mass: Massenanteil. R h : hydrodynamischer Radius. Pd: Polydispersität. MW-R: auf Grundlage<br />

von R h berechnetes Molekulargewicht.<br />

schen Radius kleiner als 1 nm konnte durch eine Kontrollmessung mit Puer als von einem<br />

Lösungsmittelbestandteil verursacht identiziert werden. Alle Signale auÿerhalb des Messbereiches<br />

wurden als Artefakte gewertet.<br />

Für die Separation <strong>der</strong> beobachteten Spezies wurde eine fraktionierte Zentrifugation für<br />

10 min bei 4 ◦ C und 3.000 20.000 × g durchgeführt und die gewonnenen Überstände analysiert.<br />

Es zeigte sich bei allen Ansätzen ein ähnliches Bild, weshalb die Zentrifugation bei<br />

150.000 × g für 1 h wie<strong>der</strong>holt wurde, um Bestandteile, die gröÿer als 50 nm sind, zu sedimentieren.<br />

Der Überstand wurde abgenommen und das Sediment im gleichen Volumen Rückfaltungspuer<br />

vorsichtig resuspendiert, um die Zusammensetzung <strong>der</strong> Populationen nicht zu<br />

verän<strong>der</strong>n. Aggregate konnten erfolgreich abgetrennt und Population 1 isoliert werden (siehe<br />

Abbildung 5.16). Die Bestimmung <strong>der</strong> Proteinkonzentration in beiden Fraktionen mittels NI<br />

Assay zeigte, dass durch die Zentrifugation etwa 20 % <strong>der</strong> Gesamtproteinmenge sedimentiert<br />

wurde. Dies entspricht dem Massenanteil von Populationen 2 und 3 (siehe Abbildung 5.15).<br />

Das im Überstand enthaltene NHA-hAgo2 wurde einem Standard-Spaltungsassay unterzogen<br />

und zeigte die kanonische sequenzspezische Spaltungsaktivität (siehe Abbildung 5.13). Somit<br />

konnte gezeigt werden, dass es sich bei Population 1 um diejenige Fraktion handelt, die<br />

enzymatisch aktives hAgo2 enthält.<br />

Population 1 war über mehrere Wochen bei 4 ◦ C lagerfähig, ohne dass es zur Bildung weiterer<br />

Populationen in <strong>der</strong> Lösung kam. Auch eine Inkubation bei Raumtemperatur über mehrere<br />

Stunden führte nicht zur Aggregatbildung, im Gegensatz zur Inkubation auf Eis. Für einen<br />

Zeitraum von 15 min blieb <strong>der</strong> Massenanteil von Population 1 konstant. Nach einer Stunde<br />

allerdings nahm <strong>der</strong> entsprechende Anteil um 15 % ab.<br />

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