Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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6.3 <strong>Charakterisierung</strong> <strong>der</strong> <strong>siRNA</strong>-<strong>vermittelten</strong> target RNA-Spaltung durch hAgo2<br />
unterschiedlicher Expressions- und Isolierungssysteme sowie die unter verschiedenen Proteinpräparationen<br />
üblichen leichten Unterschiede zurückzuführen sein. Da mit verschiedenen<br />
Substraten gearbeitet wurde, lässt sich auch ein Einuss <strong>der</strong> Sequenz, Länge o<strong>der</strong> Synthetisierung<br />
nicht ausschlieÿen. Ein möglicher Einuss des 5'-terminalen Nukleotides kann allerdings<br />
ausgeschlossen werden, da alle untersuchten Substrate an dieser Stelle ein U aufweisen [128].<br />
Natürlich muss bei den Arbeiten von Tan et al. beachtet werden, dass die Daten mit murinem<br />
statt humanem Ago2 erhoben wurden. Beide Proteine sind zu 99 % identisch [260].<br />
K d (nM)<br />
Protein<br />
experimentelles System<br />
Substrat<br />
Referenz<br />
7,1 bakteriell exprimiertes P-as2B-FAM (21 nt) Abschnitt 5.7.2<br />
rekombinantes GST-hAgo2<br />
83 in Sf9-Zellen exprimiertes 19-as (19 nt) [199]<br />
rekombinantes GST-hAgo2<br />
61 aus HeLa-Zellen immun- 19-as (19 nt) [199]<br />
präzipitiertes HA-hAgo2<br />
9,8 in Sf9-Zellen exprimiertes let-7a (22 nt) [260]<br />
rekombinantes GST-mAgo2<br />
Tabelle 6.1: Vergleich verschiedener Gleichgewichts-Dissoziationskonstanten für Komplexe aus humanem<br />
(h) o<strong>der</strong> murinem (m) Ago2 und am 5'-Ende phosphorylierter einzelsträngiger guide RNA.<br />
Eine feste Bindung <strong>der</strong> guide RNA durch hAgo2 scheint biologisch sinnvoll. Schlieÿlich ist<br />
<strong>der</strong> programmierte RISC ein zum multiplen Umsatz fähiger Enzymkomplex [6163]. Nach<br />
<strong>der</strong> Programmierung muss <strong>der</strong> guide Strang für die <strong>Erkennung</strong> und Bindung <strong>der</strong> target RNA<br />
an hAgo2 gebunden bleiben. Auch nach ihrer Spaltung und <strong>der</strong> Produktfreisetzung müssen<br />
hAgo2 und guide RNA assoziiert bleiben. Eine feste Assoziation <strong>der</strong> beiden Bindungspartner<br />
ist bereits beobachtet worden. We<strong>der</strong> unter Hochsalzbedingungen (2,5 M KCl o<strong>der</strong> 2,5 M NaCl)<br />
noch bei <strong>der</strong> Verwendung von 1 M Harnsto konnte die Dissoziation des RISC und einer<br />
gebundenen <strong>siRNA</strong> bewirkt werden [35, 168]. Weiterhin scheint es bisher unmöglich, einen<br />
programmierten RISC durch eine kompetierende <strong>siRNA</strong> zu reprogrammieren [264, 265]. Ob<br />
die Anwesenheit einer spezischen target RNA einen Einuss auf die <strong>siRNA</strong>-Bindung ausübt,<br />
ist Gegenstand aktueller Forschung.<br />
Die Entfernung <strong>der</strong> Phosphatgruppe am 5'-Ende <strong>der</strong> guide RNA führte zu einer signikant<br />
verringerten Anität. Die Gleichgewichts-Dissoziationskonstante für einen Komplex aus<br />
GST-hAgo2 und OH-as2B-FAM ist um ein 15-faches geringer (K d = 106 nM) als für denjenigen<br />
aus GST-hAgo2 und <strong>der</strong> sequenzidentischen P-as2B-FAM (K d = 7,1 nM). Dies bietet<br />
eine Erklärung, warum die Spaltungsaktivität von Ago2 bei einer Programmierung mit un-<br />
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