Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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4 Methoden<br />
4.1.11 Kryokonservierung von E. coli Bakterienstämmen<br />
E.coli Stämme wurden für die Lagerung über längere Zeiträume als Glyzerinkulturen konserviert.<br />
Dazu wurde eine Einzelkolonie des gewünschten Stammes für ca. 16 h bei 37 ◦ C und<br />
200 rpm in LB- o<strong>der</strong> TFB-Medium inkubiert. Die Zellsuspension wurde im Verhältnis 1:1 mit<br />
sterilem 87 % (v/v) Glyzerin gemischt, aliquotiert und bei 80 ◦ C gelagert.<br />
4.1.12 Bestimmung <strong>der</strong> Nukleotidsequenz von DNA<br />
Für die Sequenzierung von Plasmidabschnitten wurde zunächst Plasmid-DNA aus E. coli<br />
Stämmen gewonnen (siehe Abschnitt 4.1.2). Die Sequenzierung erfolgte nach Sanger [248].<br />
Ähnlich wie bei <strong>der</strong> PCR wird hierbei DNA an einer einzelsträngigen Vorlage neu synthetisiert.<br />
Zusätzlich zu den dNTPs sind in dem Ansatz noch Didesoxynukleotidtriphosphate<br />
(ddNTPs) enthalten, welche zufällig eingebaut werden und zum Kettenabbruch führen. Die<br />
vier ddNTPs sind mit Fluoreszenzfarbstoen markiert, die jeweils ein an<strong>der</strong>es Fluoreszenzmaximum<br />
aufweisen und dadurch unterscheidbar sind.<br />
Die Sequenzierung wurde mit Hilfe des BigDye R○ Terminator Cycle Sequencing Kit durchgeführt.<br />
Für die Sequenzier-Reaktion wurden in 20 µl-Ansätzen ca. 1 µg Plasmid-DNA als<br />
Vorlage mit 3 µl 5 × Puer, 2 µl BigDye und 1 µM Primer gemischt. Die Zielsequenz wurde<br />
im Thermocycler vervielfältigt (siehe Tabelle 4.6) und anschlieÿend auf 100 µl mit H 2 O<br />
expandiert. Die DNA wurde mit Hilfe von Ethanol präzipitiert (siehe Abschnitt 4.2.5) und<br />
getrocknet. Die weitere Verarbeitung erfolgte auÿerhalb des Instituts für Molekulare Medizin<br />
durch Mitarbeiter <strong>der</strong> Klinik für Kin<strong>der</strong>- und Jugendmedizin des Universitätsklinikums<br />
Schleswig-Holstein (UKSH). Die Auswertung <strong>der</strong> Sequenzen erfolgte mit dem Programm SeqMan<br />
7.0.0.<br />
Primer<br />
Temperaturprol<br />
pET41b fwd 96 ◦ C für 180 s<br />
972 rev 24 Zyklen<br />
1233 fwd 96 ◦ C für 20 s<br />
1411 fwd 50 ◦ C für 20 s<br />
1506 rev 60 ◦ C für 240 s<br />
2316 fwd 4 ◦ C, ∞<br />
2519 rev<br />
pET41b rev T7 term<br />
pET41b BlpI rev<br />
Tabelle 4.6: Für die Sequenzierung von Klonen verwendete Primer sowie das Temperaturprol.<br />
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