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Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...

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6 Diskussion<br />

Neue Erkenntnisse über die <strong>siRNA</strong>-Toleranz von hAgo2<br />

Nachdem die Beladung von rekombinantem hAgo2 mit einzel- und doppelsträngiger <strong>siRNA</strong><br />

gelang, konnte auch die Spaltungsaktivität <strong>der</strong> Komplexe aus GST-hAgo2 und einzelsträngiger<br />

guide RNA bzw. doppelsträngiger <strong>siRNA</strong> gezeigt werden (siehe Abschnitt 5.9.2). Der mit <strong>der</strong><br />

<strong>siRNA</strong> programmierte Komplex zeigte dieselbe sequenzspezische Spaltung an <strong>der</strong> kanonischen<br />

Stelle wie <strong>der</strong>jenige, <strong>der</strong> mit einer einzelsträngigen guide RNA beladen worden war. Dieses<br />

Ergebnis konnte nach eigenem Kenntnisstand bislang nicht gezeigt werden [35, 62, 199, 200]<br />

und beruht vermutlich auf <strong>der</strong> hohen enzymatischen Aktivität des verwendeten GST-hAgo2.<br />

Das Ergebnis impliziert, dass hAgo2 in <strong>der</strong> Lage sein muss, den passenger Strang aus dem<br />

Hybrid zu entfernen. Dabei können aus den vorliegenden Experimenten keine Rückschlüsse<br />

gezogen werden, ob dabei seine Spaltung o<strong>der</strong> eine Entwindung <strong>der</strong> komplementären Stränge<br />

eine Rolle spielt. In <strong>der</strong> Literatur nden sich Hinweise, dass <strong>der</strong> Entfernung des passenger<br />

Stranges seine Spaltung durch hAgo2 vorausgeht [36]. Vermutlich ist dieser Spaltungsschritt<br />

von demjenigen <strong>der</strong> target RNA unterschiedlich [255]. Es steht zu vermuten, dass die Entlassung<br />

<strong>der</strong> passenger Strang-Spaltprodukte in vergleichbarer Geschwindigkeit abläuft wie<br />

diejenige <strong>der</strong> target RNA-Spaltprodukte. Dafür spricht, dass die Präinkubation von GSThAgo2,<br />

P-si2B und komplementärer target RNA die Gesamtreaktion nicht beschleunigen kann<br />

(siehe Abschnitt 5.9.2). Auf Grundlage dieser Erkenntnisse muss davon ausgegangen werden,<br />

dass rekombinantes hAgo2 neben seiner Fähigkeit, target RNA zu spalten, auch <strong>siRNA</strong>-<br />

Strangtrennungsaktivität besitzt und somit einen voll funktionsfähigen rekombinanten RISC<br />

darstellt.<br />

Die Abwesenheit <strong>der</strong> Phosphatgruppe am 5'-Ende des guide Stranges führte zu einer 15-<br />

fach geringeren Anität (siehe Abschnitt 5.7.2). Ein solch gravieren<strong>der</strong> Einuss konnte auf<br />

den maximalen target RNA-Umsatz nicht beobachtet werden. Dieser lag nur um 9 % niedriger<br />

als <strong>der</strong>jenige eines mit einem phosphorylierten guide Strang beladenen GST-hAgo2. Dies<br />

impliziert, dass die Anzahl <strong>der</strong> aktiven ternären Komplexe, bei denen die korrekte Positionierung<br />

des guide Stranges gelang, einen multiplen Umsatz durchführen. Eventuell werden<br />

die Komplexe auch durch die Anwesenheit <strong>der</strong> target RNA stabilisiert, wie dies bereits durch<br />

Dynamische Lichtstreuung gezeigt werden konnte (siehe Abschnitt 5.5.5).<br />

In <strong>der</strong> Literatur sind zwei abweichende Ergebnisse beschrieben, die sich mit dem Einuss <strong>der</strong><br />

5'-Phosphatgruppe am guide Strang auf die Spaltungsreaktion beschäftigen. Liu et al. konnten<br />

mit einer 21 nt langen, einzelsträngigen guide RNA ohne 5'-Phosphatgruppe in einem in vitro<br />

Spaltungsexperiment keinerlei target RNA-Umsatz detektieren [35]. Im Gegensatz dazu zeigten<br />

Lima et al. mit einer 19 nt langen guide RNA ohne 5'-Phosphatgruppe einen target RNA-<br />

Umsatz, <strong>der</strong> knapp 10 % desjenigen durch eine 5'-phosphorylierte guide RNA <strong>vermittelten</strong><br />

betrug [199]. Im hier gezeigten Experiment konnte folglich mit OH-as2B als <strong>siRNA</strong>-Substrat<br />

ein ungewöhnlich hoher Umsatz erzielt werden.<br />

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