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Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...

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5.12 Untersuchung des Einusses von hTRBP auf die <strong>siRNA</strong>-vermittelte target<br />

RNA-Spaltung . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 160<br />

6 Diskussion 165<br />

6.1 Untersuchung <strong>der</strong> <strong>siRNA</strong>-<strong>vermittelten</strong> RNAi mit Hilfe von rekombinanten Komponenten<br />

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 166<br />

6.2 Stabilität von rekombinantem hAgo2 und hTRBP . . . . . . . . . . . . . . . . . 169<br />

6.2.1 Der Oligomerisierungszustand von hAgo2 wird durch RNAs beeinusst . 169<br />

6.2.2 Der Oligomerisierungszustand von hTRBP ist RNA-unabhängig . . . . . 170<br />

6.3 <strong>Charakterisierung</strong> <strong>der</strong> <strong>siRNA</strong>-<strong>vermittelten</strong> target RNA-Spaltung durch hAgo2 . 171<br />

6.3.1 Die Beladung von hAgo2 mit <strong>siRNA</strong> ist abhängig von <strong>der</strong> Beschaenheit<br />

des 5'-Endes des guide Stranges . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 172<br />

6.3.2 Die <strong>Erkennung</strong> und Bindung <strong>der</strong> target RNA erfolgt durch Wechselwirkungen<br />

mit <strong>der</strong> guide RNA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 179<br />

6.3.3 hAgo2 besitzt <strong>siRNA</strong>-Strangtrennungs- und target RNA-Spaltungsaktivität<br />

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 183<br />

6.3.4 Die Freisetzung <strong>der</strong> Spaltprodukte limitiert die Geschwindigkeit <strong>der</strong> Reaktion<br />

bei multiplem Umsatz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 187<br />

6.3.5 Minimales kinetisches Modell <strong>der</strong> Wirkungsweise von hAgo2 . . . . . . . 188<br />

6.4 <strong>Charakterisierung</strong> <strong>der</strong> <strong>siRNA</strong>-Bindung durch hTRBP . . . . . . . . . . . . . . . 189<br />

6.4.1 hTRBP bindet <strong>siRNA</strong> mit hoher Anität . . . . . . . . . . . . . . . . . 189<br />

6.4.2 Die Bindung von <strong>siRNA</strong> durch hTRBP beruht auf einer schnellen konformationellen<br />

Umlagerung . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 191<br />

6.4.3 Die dsRNA-bindenden Proteine hTRBP und hPACT besitzen vermutlich<br />

einen entgegengesetzten Einuss auf die <strong>siRNA</strong>-vermittelte target<br />

RNA-Spaltung durch hAgo2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 192<br />

6.5 Modell <strong>der</strong> minimalen rekombinanten RNA-Interferenz . . . . . . . . . . . . . . 193<br />

6.6 Ausblick . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 195<br />

7 Literaturverzeichnis 197<br />

A Anhang 223<br />

A.1 Theoretische Grundlagen <strong>der</strong> biochemischen und biophysikalischen Methoden . 223<br />

A.1.1 Ermittlung von Dissoziationskonstanten durch Fluoreszenztitration<br />

unter steady state Bedingungen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 223<br />

A.1.2 Ermittlung von Dissoziationskonstanten durch Verdrängungstitration<br />

unter steady state Bedingungen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225<br />

A.1.3 Ermittlung von Molekülgröÿen durch Dynamische Lichtstreuung . . . . 225<br />

A.2 Abkürzungsverzeichnis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 226<br />

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