Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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4 Methoden<br />
Es wurde für 90 min ein elektrisches Feld mit 0,8 mA/cm 2 angelegt. Die Ezienz des Elektrotransfers<br />
wurde durch Coomassie-Färbung des SDS-Gels sowie ggf. durch Ponceau S-Färbung<br />
<strong>der</strong> Membran kontrolliert (siehe Abschnitt 4.3.4).<br />
Immundetektion<br />
Für die Sättigung freier Bindungsstellen wurde die mit Proteinen beschichtete PVDF-Membran<br />
bei Raumtemperatur in Blockpuer geschwenkt. Im Anschluss erfolgte die Inkubation<br />
<strong>der</strong> Membran in einer die spezischen Primärantikörper enthaltenden Lösung. Zur Verringerung<br />
des Hintergrundsignals wurde überschüssiger Primärantikörper durch Waschen entfernt.<br />
Die Detektion <strong>der</strong> Proteine erfolgte mittels eines den Primärantikörper bindenden Sekundärantikörpers,<br />
<strong>der</strong> mit dem Enzym Meerrettich-Peroxidase (HRP) gekoppelt ist o<strong>der</strong> durch<br />
die direkte Kopplung des Primärantikörpers mit <strong>der</strong> HRP. Überschüssiger Sekundärantikörper<br />
wurde durch Waschen entfernt und die Proteine indirekt durch Chemilumineszenz mit<br />
Hilfe des Kits ECL Western Blotting Reagent nach Herstellerangaben visualisiert. Dabei katalysiert<br />
HRP die Oxidation von Luminol und die auftretende Lumineszenz wurde entwe<strong>der</strong><br />
durch Exposition <strong>der</strong> PVDF-Membran auf einem Hyperlm mit anschlieÿen<strong>der</strong> Entwicklung<br />
o<strong>der</strong> durch Fotograeren <strong>der</strong> Membran mit einer Chemilumineszenz-sensitiven Kamera detektiert.<br />
Tabelle 4.9 fasst die Versuchsbedingungen für die Immundetektion <strong>der</strong> verschiedenen<br />
Epitope zusammen. Die Zusammensetzung <strong>der</strong> Puer ist unter Abschnitt 3.6 aufgeführt.<br />
Die Auswertung <strong>der</strong> Chemilumineszenz-Aufnahmen erfolgte mit dem Programm Fusion<br />
15.09. Eine Quantizierung <strong>der</strong> Intensität einzelner Banden wurde bei Bedarf mit dem Programm<br />
Image Quant 5.2 vorgenommen.<br />
Blockierung Primärantikörper Waschen I Sekundärantikörper Waschen II<br />
Nachweis von hAgo2<br />
30 min 16 h, 4 ◦ C 3 × 5 min 1 h 5 × 5 min<br />
Blockpuer I α-Ago2 (11A9) TBS-T α-Ratte-HRP TBS-T<br />
1:50 in Block- 1:5000 in Blockpuer<br />
I<br />
puer I<br />
Nachweis von hTRBP<br />
30 min 1 h 3 × 5 min 1 h 3 × 5 min<br />
Blockpuer II α-TRBP TBS-T α-Kaninchen-HRP TBS-T<br />
1:2000 in Block- 1:2000 in Blockpuer<br />
II<br />
puer II<br />
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