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Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...

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4 Methoden<br />

Es wurde für 90 min ein elektrisches Feld mit 0,8 mA/cm 2 angelegt. Die Ezienz des Elektrotransfers<br />

wurde durch Coomassie-Färbung des SDS-Gels sowie ggf. durch Ponceau S-Färbung<br />

<strong>der</strong> Membran kontrolliert (siehe Abschnitt 4.3.4).<br />

Immundetektion<br />

Für die Sättigung freier Bindungsstellen wurde die mit Proteinen beschichtete PVDF-Membran<br />

bei Raumtemperatur in Blockpuer geschwenkt. Im Anschluss erfolgte die Inkubation<br />

<strong>der</strong> Membran in einer die spezischen Primärantikörper enthaltenden Lösung. Zur Verringerung<br />

des Hintergrundsignals wurde überschüssiger Primärantikörper durch Waschen entfernt.<br />

Die Detektion <strong>der</strong> Proteine erfolgte mittels eines den Primärantikörper bindenden Sekundärantikörpers,<br />

<strong>der</strong> mit dem Enzym Meerrettich-Peroxidase (HRP) gekoppelt ist o<strong>der</strong> durch<br />

die direkte Kopplung des Primärantikörpers mit <strong>der</strong> HRP. Überschüssiger Sekundärantikörper<br />

wurde durch Waschen entfernt und die Proteine indirekt durch Chemilumineszenz mit<br />

Hilfe des Kits ECL Western Blotting Reagent nach Herstellerangaben visualisiert. Dabei katalysiert<br />

HRP die Oxidation von Luminol und die auftretende Lumineszenz wurde entwe<strong>der</strong><br />

durch Exposition <strong>der</strong> PVDF-Membran auf einem Hyperlm mit anschlieÿen<strong>der</strong> Entwicklung<br />

o<strong>der</strong> durch Fotograeren <strong>der</strong> Membran mit einer Chemilumineszenz-sensitiven Kamera detektiert.<br />

Tabelle 4.9 fasst die Versuchsbedingungen für die Immundetektion <strong>der</strong> verschiedenen<br />

Epitope zusammen. Die Zusammensetzung <strong>der</strong> Puer ist unter Abschnitt 3.6 aufgeführt.<br />

Die Auswertung <strong>der</strong> Chemilumineszenz-Aufnahmen erfolgte mit dem Programm Fusion<br />

15.09. Eine Quantizierung <strong>der</strong> Intensität einzelner Banden wurde bei Bedarf mit dem Programm<br />

Image Quant 5.2 vorgenommen.<br />

Blockierung Primärantikörper Waschen I Sekundärantikörper Waschen II<br />

Nachweis von hAgo2<br />

30 min 16 h, 4 ◦ C 3 × 5 min 1 h 5 × 5 min<br />

Blockpuer I α-Ago2 (11A9) TBS-T α-Ratte-HRP TBS-T<br />

1:50 in Block- 1:5000 in Blockpuer<br />

I<br />

puer I<br />

Nachweis von hTRBP<br />

30 min 1 h 3 × 5 min 1 h 3 × 5 min<br />

Blockpuer II α-TRBP TBS-T α-Kaninchen-HRP TBS-T<br />

1:2000 in Block- 1:2000 in Blockpuer<br />

II<br />

puer II<br />

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