Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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Fluoreszenz<br />
5 Ergebnisse<br />
GST<br />
hAgo2<br />
6000<br />
2,4<br />
5000<br />
2,38<br />
4000<br />
2,36<br />
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20<br />
3000<br />
2000<br />
0 5000 10000 15000 20000 25000<br />
Zeit (s)<br />
Abbildung 5.35: Pre-steady state Dissoziationskinetik von binärem Komplex und target RNA (siehe<br />
Abschnitt 4.4.3). Messung des Zerfalls von ternären Komplexen aus 20 nM P-as2B-FAM und 600 nM<br />
GST-hAgo2 sowie 20 nM s2B in binäre GST-hAgo2/guide RNA-Komplexe und die freie target RNA<br />
in Anwesenheit von 2000 nM as2B. Die Messung erfolgte mit Hilfe eines Fluoreszenzspektrometers<br />
o<strong>der</strong> einer stopped ow Anlage (Darstellung bis 20 s). Die Daten wurden mit einer dreifach exponentiellen<br />
Gleichung ausgewertet und ergaben k -1 = 2,1 (± 0,25) s -1 , k -2 = 0,0024 (± 0,0002) s -1 und<br />
k -3 = 0,0003 (± 0,00006) s -1 (stopped ow) bzw. 0,0002 s -1 (Fluoreszenzspektrometer).<br />
Die dritte, langsame Phase war nach Beendigung des maximalen Messzeitraumes (1.000 s)<br />
nicht abgeschlossen, weshalb das Experiment wie<strong>der</strong>holt und die Fluoreszenzän<strong>der</strong>ung über<br />
einen Zeitraum von 34.000 s mit Hilfe eines Fluoreszenzspektrometers in Abhängigkeit <strong>der</strong> Zeit<br />
aufgezeichnet wurde. Mit dieser Technik konnten auf Grund geringerer Sensitivität die ersten<br />
beiden Phasen nicht beobachtet werden. Allerdings wurde die Existenz <strong>der</strong> dritten, langsamen<br />
Phase mit einer Ratenkonstante von 0,0002 s -1 bestätigt. Vermutlich repräsentiert k -1<br />
den Zerfall von Kollisionskomplexen; diejenige mittels Konzentrationsabhängigkeit von k 1, obs<br />
mathematisch ermittelte Ratenkonstante beträgt 11,8 s -1 . Die zweite und dritte Phase bei <strong>der</strong><br />
Dissoziation ternärer Komplexe entsprechen vermutlich konformationellen Umlagerungen und<br />
stellen die Rückreaktionen <strong>der</strong> Phasen zwei und drei <strong>der</strong> Assoziation dar. Da die dritte Phase<br />
nur in Anwesenheit von GST-hAgo2, nicht jedoch bei seiner Abwesenheit, auftritt, handelt<br />
es sich hierbei aller Wahrscheinlichkeit nach um eine konformationelle Umlagerung des Proteins.<br />
Die zweite Phase könnte die Entwindung <strong>der</strong> komplementären guide und target Stränge<br />
darstellen. Es wurde eine mögliche Dissoziation von guide und target RNA in Abwesenheit<br />
von GST-hAgo2 untersucht, jedoch konnte keine Signalän<strong>der</strong>ung festgestellt werden. Demnach<br />
handelt es sich beim hier beobachteten Zerfall ternärer Komplexe um einen protein<strong>vermittelten</strong><br />
Prozess.<br />
Die Interpretation <strong>der</strong> biochemischen und kinetischen Daten wird gestützt durch die strukturellen<br />
Informationen des T. thermophilus Agos sowie weiteren biochemischen Daten aus <strong>der</strong><br />
Literatur. Die <strong>Erkennung</strong> <strong>der</strong> target RNA durch den binären Komplex erfolgt vermutlich über<br />
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