Biochemische Charakterisierung der siRNA-vermittelten Erkennung ...
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4 Methoden<br />
Protein Temperatur <strong>der</strong> Hauptkultur Induktionszeit<br />
NHA-hAgo2 37 ◦ C 2 h<br />
hAgo2-His 37 ◦ C 2 h<br />
His-hAgo2 37 ◦ C 1 4 h<br />
GST-hAgo2-His 17 37 ◦ C 1 6 h<br />
GST-hAgo2 17 37 ◦ C 1 6 h<br />
TRBP 37 ◦ C 1 4 h<br />
Tabelle 4.10: Versuchsbedingungen für die Expression verschiedener Proteine.<br />
4.3.7 Fraktionierung von bakteriellem E. coli Extrakt<br />
Um die Expression von bakteriell exprimiertem rekombinantem Protein zu überprüfen und<br />
zu untersuchen, ob dies in löslicher o<strong>der</strong> unlöslicher Form in den E. coli Zellen vorlag, wurde<br />
ein Extrakt von Zellen vor und nach Induktion hergestellt. Die Untersuchung von Proben<br />
verschiedener Zeitpunkte nach Induktion erlaubte weiterhin die Analyse <strong>der</strong> Expressionsstärke<br />
sowie die Verteilung von löslichem und unlöslichem Protein in Abhängigkeit <strong>der</strong> Induktionszeit.<br />
Es wurden E. coli Zellen, in denen zuvor die Expression von rekombinantem Protein induziert<br />
worden war (siehe Abschnitt 4.3.6) im jeweiligen Lysispuer (siehe Abschnitt 4.3.8)<br />
resuspendiert und auf eine Konzentration von 0,05 OD 600 pro 10 µl eingestellt. Die Suspension<br />
wurde soniziert und das Gesamtzelllysat für 15 min bei 4 ◦ C und 20.000 × g zentrifugiert.<br />
Der die löslichen Proteine enthaltende Überstand wurde für die spätere Analyse verwahrt,<br />
<strong>der</strong> Nie<strong>der</strong>schlag in 200 µl 10 mM Tris pH 7,5 gewaschen, für 5 min bei 4 ◦ C und 20.000 × g<br />
zentrifugiert und im adäquaten Volumen 1 % (w/v) SDS unter Erwärmen auf 55 ◦ C gelöst.<br />
Die im Gesamtzelllysat sowie <strong>der</strong> löslichen und unlöslichen Fraktion enthaltenen Proteine wurden<br />
elektrophoretisch separiert (siehe Abschnitt 4.3.3) und durch Coomassie-Färbung (siehe<br />
Abschnitt 4.3.4) o<strong>der</strong> Western-Analyse (siehe Abschnitt 4.3.5) untersucht.<br />
4.3.8 Reinigung von rekombinanten Proteinen<br />
Es war ein zentrales Ziel dieser Arbeit, ein leistungsfähiges und reproduzierbares Reinigungssystem<br />
für rekombinantes hAgo2 zu entwickeln, mit dem im Milligramm-Maÿstab und mit<br />
zufriedenstellen<strong>der</strong> Reinheit Protein für biochemische Studien gewonnen werden konnte. Für<br />
diesen Zweck wurde hAgo2 mit fünf verschiedenen Markierungen verwendet, die je nach Eigenschaft<br />
unterschiedliche Reinigungsstrategien erlaubten. Die Entwicklung <strong>der</strong> einzelnen Protokolle<br />
ist unter Abschnitt 5.4 beschrieben. An dieser Stelle sind die Protokolle aufgeführt,<br />
die sich für das jeweilige Konstrukt als am leistungsfähigsten unter den angegebenen Gesichtspunkten<br />
erwiesen haben. Soweit möglich, erfolgten alle Arbeitsschritte zur Schonung <strong>der</strong><br />
Proteine auf Eis o<strong>der</strong> bei 4 ◦ C.<br />
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