3. Uluslararası Beyaz Et Kongresi

CM2 için ME değerleri 882 ve 925 kcal/kg KM olarak saptanmıştır. Azota göre düzeltilmiş ME
için ise Y = 2 + 795 x Camelina1 + 844 x Camelina2 regresyonu hesaplanmış ve buradan da
CM1 ve CM2 için MEn değerlerinin 795 ve 844 kcal/kg KM olduğu hesaplanmıştır. Daha önce
tartışıldığı gibi ketencik küspesinde bulunan antinutrisyonel glukosinolat ve yüksek selüloz
içeriği bu düşük metabolize olabilir enerji değerlerinin tespit edilmesine neden olmuş olabilir.
Yapılan bu çalışma sonucunda etlik piliçlerde ketencik küspesinin enerji ve azot yararlanımının
düşük olduğu belirlenmiştir. Hem glukosinolat içeriği hem de barsak içeriğindeki viskozite
artışının bulunan düşük besin maddesi sindirimi ve dolayısı ile de canlı performanstaki düşüşe
etkisinin olduğu görülmüştür. Bununla beraber özellikle viskozitedeki artışa neden olan nişasta
tabiatında olmayan polisakkaritlerin belirlenmesi ve buna bağlı olarak da eksojen enzim kullanımı
olanaklarının ileride yapılacak araştırmalarda dikkate alınması gerektiği de görülmektedir.
Kaynaklar
Acamovic, T., C. Gilbert, K. Lamb, and K. C. Walker. 1999. Nutritive value of Camelina sativa
meal for poultry. Br. Poult. Sci. 40(Suppl. 1):27–41.
Adeola, O., and M. R. Bedford. 2004. Exogenous dietary xylanase ameliorates viscosity induced
anti-nutritional effects in wheat-based diets for White Pekin ducks (Anas platyrinchos
domesticus). Br. J. Nutr. 92:87–94.
Aziza, A. E., N. Quezada, and G. Cherian. 2010a. Feeding Camelina sativa meal to meat-type
chickens: Effect on production performance and tissue fatty acid composition. J. Appl. Poult.
Res. 19:157–168.
Aziza, A. E., N. Quezada, and G. Cherian. 2010b. Antioxidative effect of dietary Camelina meal
in fresh, stored, or cooked broiler chicken meat. Poult. Sci. 89:2711–2718.
Cherian, G., A. Campbell, and T. Parker. 2009. Egg quality and lipid composition of eggs from
hens fed Camelina sativa. J. Appl. Poult. Res. 18:143–150.
Glover, J. R., C. C. S. Chapple, S. Rothwell, I. Tober, and B. E. Ellis. 1988. Allylglucosinolate
biosynthesis in Brassica carinata. Phytochemistry. 27:1345–1348.
Littell, R. C., J. Lewis, and P. R. Henry. 1995. Statistical evaluation of bioavailability assays.
Pages 5–35 in Bioavailability of Nutrients for Animals. C. B. Ammerman, D. H. Baker, and
A. J. Lewis, ed. Acad. Press, San Diego, CA.
Pekel, A. Y., P. H. Patterson, R. M. Hulet, N. Acar, T. L. Cravener, D. B. Dowler, and J. M.
Hunter. 2009. Dietary Camelina meal versus flaxseed with and without supplemental copper
for broiler chickens: Live performance and processing yield. Poult. Sci. 88:2392–2398.
Ryhänen, E. L., S. Perttilä, T. Tupasela, J. Valaja, C. Eriksson, and K. Larkka. 2007. Effect of
Camelina sativa expeller cake on performance and meat quality of broilers. J. Sci. Food
Agric. 87:1489–1494.
SAS Institute. 2006. SAS/STAT User’s Guide. Release 9.1. SAS Inst. Inc., Cary, NC.
Schuster, A., and W. Friedt. 1998. Glucosinolate content and composition as parameters of
quality of camelina seed. Ind. Crops Prod. 7:297–302.
Thacker, P., and G. Widyaratne. 2012. Effects of expeller pressed camelina meal and/or canola
meal on digestibility, performance and fatty acid composition of broiler chickens fed wheatsoybean
meal-based diets. Arch. Anim. Nutr. 66:402-415.
274