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372MARTÍNEZ, B. & PERIS, C.parámetros se alcanzan en las cabras de 1ª lactación(por ejemplo para los Criterios 2 y 3 CC=75-82%;S=77-83%; E=73-82%), seguido por las de 2ª lactación(CC=69-71% ; S=63-77% ; E= 69-75%) y,por último, los de 3ª lactación, donde dichos parámetrosempeoran sensiblemente (CC=58-62% ;S=56-82% ; E=49-61%). Por otra parte, tambiénpuede observarse que para un mismo Método y Criterio,el umbral de RCS para las cabras de segundalactación, generalmente es igual o ligeramente superior(en 50.000 cel/ml) al de las cabras de primeralactación; por el contrario en las cabras de 3ª lactaciónlos umbrales calculados aumentan de formanotable. Todo esto sugiere que, los factores devariación no infecciosos del RCS son más importantesa medida que se incrementa el número delactación, especialmente a partir de la 3ª lactación(inclusive).Respecto a la comparación entre los 3 Métodos,puede observarse que, en general, los resultados encuanto a umbral y parámetros de validez no presentangrandes diferencias entre ellos. En todo casopodemos precisar que:- Si utilizamos el Criterio 1 para el cálculo delumbral (se maximiza la sensibilidad) losmejores resultados se obtendrían en el métodoA, con umbrales de 350.000 cel/ml para 1ª y 2ªlactación y 600.000 cel/ml en 3ª lactación.- Si utilizamos el Criterio 3 (se maximiza lasmuestras correctamente clasificadas y el valorpredictivo positivo) el mejor método dependedel número de lactación: en las de 1ª lactaciónsería el Método B (Umbral=450.000 cel/ml,CC=82%; S=83%), en las de 2ª lactación elMétodo A (550.000 cel/ml; CC=71%; S=:74%)y en 3ª lactación sería tanto el Método A(1.050.000 cel/ml ; CC=68%; S=56%) como elB (900.000 cel/ml; CC=62% ; S=65%) dependiendodel parámetro de validez a que se le démás prioridad.- Si utilizamos el Criterio 2, que corresponde aun criterio intermedio a los dos anteriormenteseñalados, los 3 Métodos estudiados presentanuna validez similar para las cabras en 1ª y 2ª lactación;sin embargo en 3ª lactación el MétodoC empeora generalmente dichos parámetros respectoa los Métodos A y B.Por último es importante señalar que los casosclasificados como falsos negativos (FN) correspondieronmayoritariamente a infecciones producidaspor estafilococos coagulasa negativos (SCN),principalmente S. caprae. Por el contrario, prácticamentetodas las infecciones producidas por patógenosmayores (S. aureus, Streptococcus spp.,bacilos gram negativos) fueron clasificados comoinfectados. Hay que tener en cuenta que S. capraeposee un baja patogenidad, estimada por el limitadoincremento en el RCS (Sánchez et al., 1996 ; Martínezy Peris, 1997a) y, además, prácticamente noafecta a la producción ni composición de la leche(Martínez y Peris, datos pendientes de publicar). Eneste sentido, en el caso de plantearse realizar tratamientosde secado selectivo, parece aconsejable utilizarel Criterio 2 ó 3, ya que mejora el VPP (trataremosun menor número de cabras) y los animalesque, estando infectados, no serían tratados, correspondenmayoritariamente a infecciones por S. caprae.CONCLUSIONES1. Para efectuar el diagnóstico de mamitis subclínicasa partir del RCS del control lechero sedebería tener en cuenta el número de lactaciónde los animales, dado que al aumentar éste elumbral tiende a incrementar y los parámetrosde validez a empeorar, especialmente cuandose alcanza la 3ª lactación.2. De los tres Métodos estudiados, el A (cálculode la media geométrica de todos los controles)presenta, en general, los mejores resultados, sibien en ciertos casos el Método B (4 controlesen que el RCS es superior al umbral) alcanzamejores parámetros de validez.3. Si se planteara realizar un tratamiento selectivoal secado, parece aconsejable utilizar elCriterio 2 ó 3, ya que respecto al Criterio 1 disminuiráel número de animales a tratar y,además, el incremento en falsos negativos secorresponde mayoritariamente a infeccionesproducidas por S. caprae, el cual posee un bajopoder patógeno.REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICASANDREWS, R.J.; KITCHEN, B.J.; KWEE, W.S.;DUNCALFE, F.,1983. Relationship between individualcow somatic cell counts and the mastitisinfection status of udder. Austr. J, Dairy Technol.38:71-74.DE CRÉMOUX, R.; PUOTREL, B.; PILLET, R.;PERRIN, G.; DUCELLIEZ, M.; HEUCHEL, V.(1994). Utilisation des numérations cellulairespour le diagnostic des infections mammairesd´origene bactérienne chez la chèvre. Interna-
UTILIZACIÓN DEL RCS DEL CONTROL LECHERO DENTRO DE UN PROGRAMA DE CONTROLDE MAMITIS SUBCLINICAS EN EL GANADO CAPRINO373tional Symposium “Somatic Cells and Milk OfSmall Ruminants”. Bella. Italia.HARMON, R.J.; EBERHART, R.J.; JASPER, D.E.;LANGLOIS, B.E.; WILSON, R.A. (1990).Microbiological procedures for the diagnosis ofbovine udder infection. Ed. National MastitisCouncil, inc. 1840 Wilson Boulevard. ArlingtonVA 22201. 33pp.MARTÍNEZ, B.; PERIS, C. (1997a). Mamitis enganado caprino: etiología y su relación con elrecuento de células somáticas. XXII Jornadascientíficas de la Sociedad Española de Ovinotecniay Caprinotecnia. Puerto de la Cruz-Tenerife.MARTÍNEZ, B.; PERIS, C. (1997b). Diagnósticode mamitis subclínicas en cabras a partir delrecuento de células somáticas del control lechero(datos preliminares). XXII Jornadas científicasde la S. E.O.C.. Puerto de la Cruz-Tenerife.SÁNCHEZ, A.; CONTRERAS, A ; CORRALES,J.C. ; SIERRA, D y MARCO, J. C, 1998b.Influencia de los patógenos intramamarios en losrecuentos de células somáticas de la leche decabra. XXI Jornadas Científicas de la S.E.O.C..Logroño.SÁNCHEZ, A.; CORRALES, J.C.; MARCO, J;CONTRERAS, A.; (1998). Aplicación delrecuento de células somáticas para el control delas mamitis caprinas. En: “Mamitis caprina II”.Ovis 54:37-51.
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586LANDETE-CASTILLEJOS, T. • GARD
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