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VOLUMEN I

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medio apropiado siempre que el lumen o el<br />

interior del material quede lleno con medio.<br />

Incubar y proceder según se indica en<br />

Procedimiento.<br />

Para guías de transfusión o perfusión o cuando<br />

el tamaño de la muestra hace impracticable su<br />

inmersión y si sólo la cara interna del tubo debe<br />

ser estéril, lavar los lúmenes de veinte unidades<br />

con una cantidad suficiente de Medio Tioglicolato<br />

y el lumen de veinte unidades con una cantidad<br />

suficiente de Medio Digerido de Caseína-Soja<br />

para obtener no menos de 15 ml de cada medio.<br />

Para instrumentos en los cuales el lumen es<br />

demasiado pequeño como para permitir el paso<br />

del Medio Tiogliocolato, se lo debe sustituir por el<br />

Caldo Tigliocolato Alternativo siempre que el<br />

medio se emplee en condiciones anaeróbicas.<br />

Cuando a causa del tamaño y forma de un<br />

dispositivo no pueda llevarse a cabo el ensayo de<br />

esterilidad por inmersión, sumergir en los medios<br />

de cultivo las partes que estarán en contacto con el<br />

paciente. Para catéteres en los que es requisito de<br />

esterilidad tanto su interior como su exterior,<br />

cortarlos en porciones tales que el medio se<br />

encuentre en contacto con todo el dispositivo.<br />

Cuando la muestra en el medio interfiera con<br />

el ensayo debido a su acción bacteriostática o<br />

fungistática, proceder según se indica en Método<br />

de filtración por membrana.<br />

Procedimiento<br />

Examinar el medio visualmente para<br />

comprobar si hay crecimiento microbiano al<br />

tercer, cuarto o quinto día; al séptimo u octavo y<br />

el último día del período del ensayo.<br />

Cuando el material ensayado produce turbidez<br />

en el medio y la observación visual del<br />

crecimiento de bacterias u hongos es dificultosa,<br />

transferir porciones apropiadas de la mezcla que<br />

contiene la muestra y el medio a envases con<br />

medio de cultivo nuevo, durante el período del<br />

tercer al séptimo día después de haber empezado<br />

el ensayo. Se debe continuar con la incubación de<br />

varias muestras, la inicial y la de transferencia por<br />

no menos de 14 días desde la incubación inicial.<br />

INTERPRETACION DEL ENSAYO DE<br />

ESTERILIDAD<br />

En zonas limpias y en áreas limpias - En los<br />

intervalos indicados durante y al final del período<br />

de incubación, se debe observar el contenido de<br />

todos los recipientes empleados para la detección<br />

de desarrollo microbiano. Si no se observa<br />

desarrollo, el producto cumple con los requisitos<br />

del ensayo de esterilidad.<br />

Si se observa desarrollo microbiano, pero si<br />

los monitoreos de las instalaciones donde se lleva<br />

a cabo el ensayo, de los materiales empleados, la<br />

técnica empleada y los controles negativos indican<br />

que el procedimiento fue inapropiado, el ensayo<br />

se declara nulo y debe repetirse. Si se observa<br />

desarrollo microbiano confirmado<br />

microscópicamente y no existen evidencias<br />

suficientes para anular el ensayo, el producto no<br />

cumple con los requisitos del ensayo de<br />

esterilidad.<br />

En aisladores - Cuando el ensayo de<br />

esterilidad se realiza en aislador, el producto<br />

cumple con los requisitos del ensayo de<br />

esterilidad cuando no se observa desarrollo<br />

microbiano. Cuando se observa desarrollo<br />

microbiano y es confirmado microscópicamente,<br />

el producto no cumple con los requisitos del<br />

ensayo de esterilidad. El ensayo no se considera<br />

válido cuando se demuestra pérdida de integridad<br />

física del aislador, por falla en la técnica aséptica<br />

o por materiales no estériles dentro del aislador.<br />

En estos casos se debe repetir el ensayo.

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