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VOLUMEN I

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suero a tubos estériles y conservar a temperatura<br />

inferior a –20°C, Al menos una producción de 40%<br />

de suero es obtenido por este procedimiento.<br />

Determinación del título de anticuerpos - Los<br />

ensayos de ELISA e IUTo son algunos ejemplos de<br />

métodos inmunoquímicos que han sido encontrados<br />

adecuados para la determinación del título de<br />

anticuerpos.<br />

Determinación del título de anticuerpos en<br />

suero de cobayos por ensayo de ELISA - Se<br />

realizan diluciones de la muestra y del suero de<br />

referencia en placas de ELISA adsorbidos con<br />

toxoide tetánico. Se incluyen en cada placa un<br />

control de suero de cobayo positivo y un control de<br />

suero de cobayo negativo para monitorear la<br />

performance del ensayo. Se agrega anticuerpos de<br />

conejo o cabra anti-IgG de cobayo conjugado a<br />

peroxidasa seguido por el agregado de un sustrato<br />

de peroxidasa. Se mide la absorbancia y se calcula<br />

el título relativo de anticuerpos utilizando métodos<br />

estadísticos usuales.<br />

Reactivos y equipamiento:<br />

- placas de ELISA de 96 pocillos, 1-12<br />

columnas, filas A-H<br />

- antisuero de cobayo contra Clostridium tetani<br />

- conjugado de peroxidasa: anticuerpos de<br />

conejo o cabra contra IgG de cobayo conjugados a<br />

peroxidasa.<br />

- toxoide tetánico<br />

- Solución reguladora de carbonato para<br />

cobertura pH 9,6: Disolver 1,59 g de carbonato de<br />

sodio anhidro y 2,93 g de carbonato ácido de sodio<br />

en 1.000 ml de agua. Distribuir en botellas de<br />

150 ml y esterilizar por autoclave a 121 °C por<br />

15 minutos.<br />

- Solución reguladora salina fosfatada pH 7.4<br />

(PBS): Disolver con agitación 80 g de cloruro de<br />

sodio, 2,0 g de fosfato diácido de potasio, 14,3 g de<br />

fosfato monoácido disódico dihidratado y 2,0 g de<br />

cloruro de potasio en 1.000 ml de agua. Conservar<br />

a temperatura ambiente para prevenir la<br />

cristalización. Diluir 10 veces su volumen con agua<br />

antes de usar.<br />

- Solución de ácido cítrico: Disolver 10,51 g de<br />

ácido cítrico en 1.000 ml de agua y ajustar la<br />

solución a pH 4.0 con una solución de hidróxido de<br />

sodio 400 g por litro<br />

- Solución reguladora de lavado: PBS<br />

conteniendo 0,5 g por litro de polisorbato 20<br />

- Solución diluyente bloqueante: PBS<br />

conteniendo 0,5 g por litro de polisorbato 20 y 25 g<br />

por litro de leche descremada deshidratada.<br />

- Sustrato de la peroxidasa: Poco antes de su<br />

uso, disolver 10 mg de 2,2 azino-bis(3etilbenzotiazolina-6-sulfonato)de<br />

diamonio en 20 ml<br />

de solución de ácido cítrico. Inmediatamente antes<br />

de su uso agregar 5 µl de solución de peróxido de<br />

hidrogeno fuerte.<br />

Método:<br />

La siguiente descripción es dada como ejemplo<br />

de un posible diseño de la placa pero pueden ser<br />

utilizados otros diseños. Los pocillos 1 A-H son<br />

para el suero control negativo y los pocillos 2 A-H<br />

y 3 A-H son para el suero control positivo para<br />

monitoreo del ensayo. Los pocillos 4-12 A-H son<br />

para muestras. Cubrir cada pocillo de las placas de<br />

ELISA con 100 µl de solución de toxoide tetánico<br />

(0,5 Lf por ml en solución reguladora de carbonato<br />

para cobertura).<br />

Incubar toda la noche a 4 °C en una atmósfera<br />

húmeda. Para evitar interferencia por el gradiente<br />

de temperatura no apilar más de 4 placas. Al día<br />

siguiente, lavar las placas completamente con<br />

solución reguladora de lavado. Bloquear las placas<br />

por agregado de 100 µl de solución diluyente<br />

bloqueante en cada pocillo.<br />

Incubar en atmósfera húmeda a 37 °C por una<br />

hora. Lavar las placas completamente con solución<br />

reguladora de lavado. Colocar 100 µl solución<br />

diluyente bloqueante en cada pocillo de las placas,<br />

excepto aquellas de la fila A. Preparar diluciones<br />

adecuadas de suero control negativo, suero control<br />

positivo (a partir de 0,01 UI por ml) y del suero a<br />

ensayar. Asignar el suero control negativo a la<br />

columna 1, suero control positivo a las columnas 2<br />

y 3, el suero a ensayar a las columnas 4-12 y<br />

agregar 100 µl de cada suero a los primeros 2<br />

pocillos de la columna a la cual fue asignado.<br />

Utilizando una micropipeta multicanal, realizar<br />

diluciones seriadas al medio a partir de la fila B<br />

hacia abajo de la placa hasta la fila H por<br />

transferencia de 100 µl hacia el siguiente pocillo.<br />

Descartar 100 µl de la última fila de manera que<br />

todos los pocillos contengan 100 µl. Incubar a<br />

37 °C por 2 horas. Lavar minuciosamente con<br />

solución reguladora de lavado. Preparar diluciones<br />

adecuadas (p.ej. una dilución 1/2000) del conjugado<br />

de peroxidasa en solución diluyente bloqueante y<br />

agregar 100 µl a cada pocillo. Incubar a 37 °C en<br />

atmósfera húmeda por 1 hora. Lavar las placas con<br />

solución reguladora de lavado. Agregar 100 µl de<br />

sustrato de peroxidasa a cada pocillo. Incubar a<br />

temperatura ambiente, protegido de la luz, por<br />

30 minutos. Leer las placas a 405 nm en el mismo<br />

orden en que el sustrato fue agregado.<br />

Determinación del título de anticuerpos en suero<br />

de cobayos por inhibición de la unión del toxoide o<br />

de la toxina (IUTo).<br />

Se agrega la toxina o el toxoide tetánico a<br />

diluciones seriadas del suero muestra y de<br />

referencia; la mezcla suero/ antígeno se incuban<br />

toda la noche. Para determinar el toxoide o la toxina

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