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VOLUMEN I

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ando como diluyente una solución de 9 g por litro<br />

de cloruro de sodio y albúmina humana 10 a 50 g<br />

por litro. Añadir a cada dilución cantidades adecuadas<br />

de un reactivo von Willebrand conteniendo<br />

plaquetas humanas estabilizadas y ristocetina A.<br />

Mezclar sobre una placa de vidrio con movimientos<br />

circulares durante 1 minuto. Dejar reposar durante<br />

1 minuto y observar sobre fondo oscuro con iluminación<br />

lateral. La última dilución que presenta<br />

aglutinación claramente visible indica el título de<br />

cofactor de ristocetina en la muestra. Emplear el<br />

diluyente como control negativo.<br />

ACTIVIDAD ANTICOMPLEMENTARIA<br />

Llevar a cabo la determinación de la actividad<br />

anticomplemento (AAC) de la inmunoglobulina por<br />

incubación de una determinada cantidad de sustancia<br />

a examinar (10 mg de inmunoglobulina) con una<br />

determinada cantidad de complemento de cobayo<br />

(20 CH 50 ), seguida de la titulación del complemento<br />

residual. Expresar la actividad anticomplemento<br />

como el porcentaje de complemento consumido<br />

respecto al complemento control considerado como<br />

100 %. La unidad hemolítica de actividad del complemento<br />

(CH 50 ) es la cantidad de complemento<br />

que, en las condiciones de la reacción, provoca la<br />

lisis de 2,5 × 10 8 eritrocitos sobre un total de<br />

5 × 10 8 eritrocitos sensibilizados de forma óptima.<br />

Reactivos<br />

Solución concentrada de magnesio y calcio -<br />

Disolver 1,103 g de cloruro de calcio y 5,083 g de<br />

cloruro de magnesio en agua y diluir hasta 25 ml<br />

con el mismo solvente.<br />

Solución reguladora concentrada de barbital -<br />

Disolver 207,5 g de cloruro de sodio y 25,48 g de<br />

barbital sódico en 4 litros de agua y ajustar a pH 7,3<br />

con ácido clorhídrico 1 M. Agregar 12,5 ml de<br />

Solución concentrada de magnesio y calcio y diluir<br />

hasta 5 litros con agua. Filtrar a través de una<br />

membrana filtrante de 0,22 µm y conservar a 4 °C<br />

en envases de vidrio.<br />

Solución de gelatina - Disolver 12,5 g de gelatina<br />

en aproximadamente 800 ml de agua y calentar<br />

a ebullición en un baño de agua. Enfriar a 20 °C y<br />

completar hasta 10 litros con agua. Filtrar a través<br />

de una membrana filtrante de 0,22 µm y conservar a<br />

4 °C. [NOTA: emplear únicamente soluciones<br />

límpidas.]<br />

Solución citratada - Disolver 8,0 g de citrato de<br />

sodio, 4,2 g de cloruro de sodio y 20,5 g de glucosa<br />

en 750 ml de agua. Ajustar a pH 6,1 con una solución<br />

de ácido cítrico 100 g por litro y diluir hasta<br />

1 litro con agua.<br />

Dilución de hemolisi<br />

Solución reguladora gelatina-barbital - Agregar<br />

4 volúmenes de Solución de gelatina a<br />

1 volumen de Solución reguladora concentrada de<br />

barbital y mezclar. Ajustar a pH 7,3, si fuera necesario,<br />

con ácido clorhídrico 1 M o hidróxido de<br />

sodio 1 M y mantener a 4 °C. [NOTA: preparar en<br />

el día de su uso.]<br />

Sangre de carnero estabilizada - Recolectar<br />

1 volumen de sangre de carnero sobre 1 volumen de<br />

Solución citratada y mezclar. Conservar la sangre<br />

estabilizada a 4 °C durante un mínimo de 7 días y<br />

un máximo de 28 días. [NOTA: la sangre de carnero<br />

o los eritrocitos de carnero estabilizados se pueden<br />

obtener comercialmente.]<br />

Hemolisina - Antisuero frente a los eritrocitos<br />

de carnero, preparado en conejo [NOTA: dichos<br />

antisueros se pueden obtener comercialmente.]<br />

Complemento de cobayo - Mezclar los sueros<br />

obtenidos a partir de la sangre de al menos diez<br />

cobayos. Separar el suero de la sangre coagulada<br />

por centrifugación a 4 °C aproximadamente. Conservar<br />

el suero en pequeñas cantidades a una temperatura<br />

inferior a –70 °C.<br />

Método<br />

Preparación de la suspensión patrón de eritrocitos<br />

de carnero al 5 %<br />

Separar los eritrocitos de carnero por centrifugación<br />

de un volumen adecuado de sangre de carnero<br />

estabilizada. Lavar las células tres veces como<br />

mínimo con Solución reguladora gelatina-barbital<br />

y preparar una suspensión al 5 % v/v en Solución<br />

reguladora gelatina-barbital. Determinar la concentración<br />

celular según se indica a continuación.<br />

Agregar 0,2 ml de la suspensión a 2,8 ml de agua y<br />

centrifugar el lisado durante 5 minutos a 1.000 g.<br />

La concentración celular es adecuada si la absorbancia<br />

del líquido sobrenadante, determinada a<br />

541 nm, es de 0,62 ± 0,01. Corregir la concentración<br />

celular por adición de un volumen de Solución<br />

reguladora gelatina-barbital hasta un V f , calculado<br />

por la fórmula siguiente:<br />

AV o /0,62<br />

en la cual V o es el volumen inicial de la suspensión<br />

original y A es la absorbancia de la suspensión<br />

original a 541 nm. La suspensión ajustada contiene<br />

aproximadamente 10 9 células por ml.<br />

Titulación de la hemolisina<br />

Preparar las diluciones de hemolisina según el<br />

siguiente esquema:<br />

Preparada usando

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