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VOLUMEN I

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Cuando se indica para un banco maestro de<br />

células, un banco de trabajo de células, un lote de<br />

semilla de virus o para controles de células,<br />

proceder según se indica en Método de cultivo y<br />

Método del indicador en cultivos celulares.<br />

Cuando se indica para cosechas virales, graneles de<br />

vacuna o lotes finales de producto proceder según<br />

se indica en Método de cultivo.<br />

<br />

<br />

Realizar el ensayo usando un número suficiente<br />

de medios líquidos y sólidos que asegure el<br />

crecimiento en las condiciones de incubación<br />

elegidas de un pequeño número de micoplasmas<br />

que puede estar presente en el material a ser<br />

examinado. Los medios líquidos deben contener<br />

rojo fenol. Las propiedades nutritivas de cada<br />

nuevo lote de medio se deben verificar usando los<br />

siguientes organismos:<br />

Acholeplasma laidlawii: para vacunas a las que<br />

se les ha agregado antibiótico durante su<br />

producción.<br />

Mycoplasma gallisepticum: cuando se ha usado<br />

material de origen aviar durante la elaboración.<br />

Mycoplasma orale: para vacunas de uso<br />

humano.<br />

Mycoplasma pneumoniae: para vacunas de uso<br />

humano.<br />

Mycoplasma synoviae: para vacunas de uso<br />

humano.<br />

<br />

Dividir los medios inoculados en dos porciones<br />

iguales e incubar una en condiciones aeróbicas y la<br />

otra en condiciones de microaerofilia; para medios<br />

sólidos mantener una atmósfera de adecuada<br />

humedad para prevenir la evaporación de la<br />

superficie. Para medios sólidos en condiciones<br />

aeróbicas, incubar en una atmósfera de aire que<br />

contenga entre 5 y 10 %de dióxido de carbono. Para<br />

medios sólidos en condiciones de microaerofilia<br />

incubar en una atmósfera de nitrógeno que contenga<br />

entre 5 y 10 % de dióxido de carbono.<br />

<br />

Realizar la determinación de las propiedades<br />

nutritivas para cada nuevo lote de medio. Inocular<br />

el medio elegido con el organismo de ensayo<br />

correspondiente; usar no más de 100 ufc por placa<br />

de 60 mm conteniendo 9 ml de medio sólido y no<br />

más de 40 ufc por envase de medio líquido<br />

conteniendo 100 ml; usar placas separadas para<br />

cada organismo ensayado. Incubar los medios en las<br />

condiciones que serán usadas para el ensayo sobre<br />

producto. El medio cumple con el ensayo para<br />

propiedades nutritivas si se verifica un apropiado<br />

crecimiento del organismo y un apropiado cambio<br />

de color del medio líquido.<br />

<br />

Realizar el ensayo de propiedades nutritivas en<br />

presencia del producto en ensayo. Si el crecimiento<br />

del organismo elegido es menor que el encontrado<br />

en ausencia del producto, éste contiene sustancias<br />

inhibitorias que deben ser neutralizadas antes de<br />

realizar el ensayo para micoplasmas. La efectividad<br />

de la neutralización u otro proceso debe ser<br />

comprobada repitiendo el ensayo para sustancias<br />

inhibitorias después de la neutralización.<br />

<br />

<br />

Para medios sólidos usar placas de 60 mm de<br />

diámetro conteniendo 9 ml de medio. Inocular<br />

0,2 ml del producto a ser examinado en cada una de<br />

por lo menos dos placas de medio sólido. Para<br />

medios líquidos inocular 10 ml de producto cada<br />

100 ml de medio. Incubar entre 35 y 38 ºC en<br />

condiciones de aerobiosis y de microaerofilia,<br />

durante 21 días; paralelamente incubar una porción<br />

de 100 ml de cada medio sin inocular para usar<br />

como control. Si durante el agregado del producto<br />

en ensayo se produce cualquier cambio de pH,<br />

restaurar el valor de pH del medio de cultivo<br />

mediante el agregado de una solución de hidróxido<br />

de sodio o de ácido clorhídrico.<br />

Al primero, segundo y tercer día después de la<br />

inoculación subcultivar cada cultivo líquido por<br />

inoculación de 0,2 ml en cada una de dos placas de<br />

cada medio sólido utilizado e incubar entre 35 y<br />

38 ºC en aerobiosis y microaerofilia durante no<br />

menos de 21 días. Repetir este procedimiento al<br />

sexto, séptimo y octavo día y nuevamente a los<br />

trece o catorce días de iniciado el ensayo. Observar<br />

los medios líquidos cada dos o tres días y si se<br />

produce cualquier cambio de color subcultivar<br />

inmediatamente. Observar los medios sólidos una<br />

vez a la semana.<br />

Si los medios líquidos evidencian<br />

contaminación fúngica o bacteriana repetir el<br />

ensayo. Si, no antes de los 7 días después de la<br />

inoculación, no más de una placa de cada paso del<br />

ensayo se contamina con hongos o bacterias o se<br />

rompe, esa placa debe ser ignorada si se comprueba<br />

por examinación inmediata que no presenta<br />

evidencia de crecimiento de micoplasmas. Si, en<br />

cualquier paso del ensayo más de una placa se

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