06.10.2014 Views

VOLUMEN I

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

mitad debe ser analizada, si fuera necesario, en<br />

cultivos de células renales de otra especie de mono,<br />

de tal modo que las pruebas sean practicadas en<br />

cultivos celulares procedentes de al menos una<br />

especie de sensibilidad conocida frente al virus<br />

SV40.<br />

Inocular las suspensiones neutralizadas en<br />

frascos de estos cultivos celulares, de modo que la<br />

dilución de la suspensión en el medio nutritivo no<br />

exceda una proporción 1 en 4. El área de la capa<br />

celular debe ser al menos 3 cm 2 / ml de suspensión<br />

neutralizada. Al menos un frasco de cada tipo de<br />

cultivo celular no se debe inocular para emplear<br />

como control. Mantener este frasco con medio<br />

nutritivo que contenga la misma concentración de<br />

antisuero específico utilizado para la neutralización.<br />

Se puede emplear suero animal en la multiplicación<br />

de las células, con la condición de que no contenga<br />

anticuerpos SV40, pero después de la inoculación<br />

de la preparación en el material de ensayo, el medio<br />

de mantenimiento no debe contener otro suero que<br />

el antisuero neutralizante del poliovirus, salvo en<br />

las condiciones descriptas más adelante.<br />

Los cultivos se deben incubar a una temperatura<br />

entre 35 y 37 °C y observar durante un período de<br />

al menos 4 semanas. Durante este período de<br />

observación, y después de 2 semanas de incubación<br />

como mínimo, se efectúa al menos 1 subcultivo de<br />

cada uno de los cultivos sobre el mismo sistema de<br />

cultivo celular. Los subcultivos también se deben<br />

mantener en observación durante al menos 2<br />

semanas. Se puede agregar suero al cultivo inicial<br />

en el momento del subcultivo, con la condición de<br />

que no contenga anticuerpos SV40.<br />

Realizar ensayos adicionales para determinar la<br />

ausencia de agentes extraños en otra muestra de<br />

cosechas individuales neutralizadas, por<br />

inoculación de 10 ml de muestra en cultivos de<br />

células humanas sensibles al virus del sarampión.<br />

Las técnicas de inmunofluorescencia resultan<br />

útiles para la detección del virus SV40 o de otros<br />

virus en las células.<br />

Los ensayos no son válidos si más de 20 por<br />

ciento de los frascos del cultivo fueron rechazados<br />

por razones accidentales no específicas al final de<br />

los períodos de tiempo respectivos de los ensayos.<br />

Si se produce algún cambio citopático en alguno<br />

de los cultivos, se deben investigar las causas del<br />

mismo. Si se demuestra que los cambios citopáticos<br />

se deben a poliovirus no neutralizados, se debe<br />

repetir el ensayo. Si se evidencia la presencia de<br />

SV40 o de otros agentes extraños atribuibles a la<br />

cosecha individual, ésta debe ser descartada.<br />

Cosechas monovalentes (mezcla)<br />

Las cosechas monovalentes (mezcla) se deben<br />

preparar mezclando un número de cosechas<br />

individuales satisfactorias del mismo tipo viral. Las<br />

cosechas monovalentes (mezcla) producidas en una<br />

línea celular continua pueden ser purificadas.<br />

Filtrar cada cosecha monovalente (mezcla) a través<br />

de un filtro que retenga las bacterias.<br />

Para la preparación de la vacuna final a granel<br />

sólo se puede utilizar una cosecha monovalente<br />

(mezcla) que cumpla con los siguientes requisitos.<br />

Identificación<br />

Identificar poliovirus de un tipo dado en cada<br />

cosecha monovalente (mezcla) empleando<br />

anticuerpos específicos.<br />

Concentración de virus<br />

Determinar la concentración del virus según se<br />

indica en Valoración como base para el cálculo de<br />

las diluciones para la preparación de la vacuna final<br />

a granel, para tener la cantidad de virus empleado<br />

en 339. Ensayo de neurovirulencia para vacunas a<br />

virus vivo y para establecer y monitorear la<br />

uniformidad de la producción.<br />

Marcadores genéticos<br />

Determinar la relación entre la capacidad de<br />

multiplicación del virus en la mezcla monovalente<br />

cosechado en un rango de temperaturas<br />

comprendidas entre 36 y 40 °C en comparación con<br />

el lote semilla o con una preparación de referencia<br />

destinada a ensayos de marcador y con cepas rct/40-<br />

y rct/40+ adecuadas del poliovirus del mismo tipo.<br />

Controlar las temperaturas de incubación empleadas<br />

en el ensayo, con una precisión de ± 0,1 °C. La<br />

cosecha monovalente (mezcla) cumple con el<br />

ensayo si el título del virus determinado a 36 °C,<br />

cuando tanto en la cosecha como en la preparación<br />

de referencia, el título es al menos 5,0 log mayor<br />

que el determinado a 40 °C. Si el crecimiento a<br />

40 °C es tan bajo que no se puede establecer una<br />

comparación válida, se emplea una temperatura<br />

comprendida entre 39,0 y 39,5 °C; a esta<br />

temperatura la reducción del título de virus en el<br />

material de referencia debe ser tal que se encuentre<br />

entre 3,0 log y 5,0 log de su valor a 36 °C; la<br />

reducción mínima aceptable, para cada cepa de<br />

virus, se debe determinar a una temperatura dada.<br />

Si los títulos obtenidos para 1 o más de los virus de<br />

referencia no son concordantes con los valores<br />

esperados se debe repetir el ensayo.<br />

Ensayo de Neurovirulencia para vacunas a<br />

virus vivo <br />

Proceder según se indica en Ensayo para la<br />

vacuna contra la poliomielitis oral.

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!