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VOLUMEN I

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contamina accidentalmente con hongos o bacterias<br />

o se rompe, el ensayo no es válido y debe repetirse.<br />

Incluir en el ensayo controles positivos<br />

preparados inoculando no más de 100 ufc de<br />

especies como M. orale o M. pneumoniae.<br />

Al finalizar el periodo de incubación, examinar<br />

microscópicamente todos los medios sólidos<br />

inoculados para la presencia de micoplasmas. El<br />

producto cumple el ensayo si no se produce<br />

crecimiento de micoplasmas en todos los medios<br />

inoculados. Si se produce crecimiento de<br />

micoplasma, el ensayo debe ser repetido una vez<br />

usando el doble de la cantidad de inóculo, medios y<br />

placas, si no se produce crecimiento de<br />

micoplasmas el producto cumple el ensayo. El<br />

ensayo es no válido si no se produce crecimiento en<br />

los controles positivos.<br />

MÉTODO DEL INDICADOR<br />

EN CULTIVO CELULAR<br />

Los cultivos celulares se tiñen con un colorante<br />

que se une al ADN. Los micoplasmas se detectan<br />

por su patrón particulado o filamentoso de<br />

fluorescencia sobre la superficie de la célula y, en<br />

los casos de contaminación abundante también en<br />

las áreas circundantes.<br />

Verificación del sustrato<br />

Usando un cultivo de células Vero como<br />

sustrato, preensayar el procedimiento usando un<br />

inóculo de no más de 100 ufc de una cepa que<br />

crezca en medio sólido o líquido y desafiar su<br />

capacidad para detectar contaminación potencia por<br />

micoplasmas tales como Mycoplasma hyorhinis y<br />

Mycoplasma orale. Puede utilizarse un sustrato<br />

celular diferente, por ejemplo la línea celular de<br />

producción, si se ha demostrado que provee la<br />

misma sensibilidad para la detectación de potencial<br />

contaminación por micoplasmas.<br />

Método<br />

Emplear no más de 1 ml del producto en ensayo<br />

para inocular por duplicado un área no menor a<br />

25 cm 2 del cultivo celular indicador creciendo<br />

confluente. Incluir en el ensayo un control negativo<br />

(no infectado) y dos controles positivos de<br />

micoplasmas tales como Mycoplasma hyorhinis y<br />

Mycoplasma orale. Usar un inóculo de no más de<br />

100 ufc para los controles positivos.<br />

Si para suspensiones virales la interpretación de<br />

los resultados se ve afectada por el efecto<br />

citopático, el virus puede ser neutralizado usando<br />

un antisuero específico que no tenga efecto<br />

inhibitorio sobre micoplasmas o el sustrato celular y<br />

que no permita el crecimiento de los virus. Para<br />

demostrar la ausencia de efectos inhibitorios en el<br />

suero, llevar a cabo controles positivos en presencia<br />

y en ausencia del antisuero.<br />

Procedimiento<br />

Sembrar el cultivo celular a una densidad<br />

regular (2x10 4 a 2x10 5 cel/ml o 4x10 3 a 2,5x10 4<br />

cel/cm 2 ) e incubar a 36 ± 1 ºC durante por lo menos<br />

2 días. Inocular el producto en ensayo e incubar<br />

durante por lo menos 2 días; realizar no menos de<br />

un subcultivo. Permitir el crecimiento del último<br />

subcultivo en una superficie apropiada para el<br />

procedimiento del ensayo. No permitir que el<br />

último subcultivo alcance a ser confluente ya que<br />

esto podría inhibir la tinción e impedir la<br />

visualización de los micoplasmas. Descartar el<br />

medio. Enjuagar la monocapa con Solución<br />

reguladora fosfato salina pH 7,4 luego con una<br />

mezcla de iguales volúmenes del mismo solvente y<br />

una solución fijadora apropiada y por último con la<br />

solución fijadora. Agregar la solución fijadora y<br />

dejar reposar durante 10 minutos. Eliminar y<br />

descartar la solución fijadora. Si la monocapa va a<br />

ser teñida posteriormente, secar completamente y si<br />

la monocapa va a ser teñida directamente, eliminar<br />

la solución fijadora con dos lavados con agua<br />

destilada estéril y descartar el agua. Agregar<br />

bisbenzimida diluida (SR) o cualquier otro<br />

colorante para ADN y dejar reposar durante<br />

10 minutos. Eliminar el colorante y lavar la<br />

monocapa con agua.<br />

Examinar por epifluorescencia (filtro de<br />

excitación a 300 nm/380 nm, filtro barrera LP<br />

440 nm) con un aumento entre 100 y 400 × o<br />

mayor. Comparar la apariencia microscópica del<br />

cultivo de ensayo con los controles positivos y<br />

negativos, examinando la fluorescencia<br />

extranuclear. Los micoplasmas se visualizan como<br />

puntos o filamentos sobre el citoplasma celular y,<br />

en algunos casos en los espacios intercelulares.<br />

El producto a ser examinado cumple con el<br />

ensayo si no se exhibe evidencia de la presencia de<br />

micoplasmas en los cultivos de ensayo inoculados<br />

con el producto. El ensayo sólo es válido si los<br />

controles positivos exhiben evidencia de la<br />

presencia de micoplasma.

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