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VOLUMEN I

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Glucosa monohidrato…………………..… 2,50 g<br />

Fosfato dibásico de potasio…………………2,50 g<br />

Cloruro de sodio…………………………. 5,00 g<br />

Agua purificada c.s.p……………………. 1.000 m<br />

pH después de la esterilización: 7,3 ± 0,2.<br />

Disolver los componentes sólidos en el agua,<br />

calentando suavemente. Enfriar la solución a<br />

temperatura ambiente y ajustar con hidróxido de<br />

sodio 1 N para obtener, después de la esterilización,<br />

un pH de 7,3 ± 0,2. Filtrar, si fuera necesario, y<br />

envasar en recipientes apropiados. Esterilizar<br />

empleando un procedimiento validado.<br />

Medios para penicilinas, cefalosporinas,<br />

cefamicinas y monobactámicos<br />

Cuando se empleen Medio Tioglicolato y Caldo<br />

Digerido de Caseína-Soja en el Método de<br />

transferencia directa para penicilinas o<br />

cefalosporinas, suplementarlos mediante el<br />

agregado en forma aséptica de cantidad suficiente<br />

de una beta-lactamasa apropiada para inactivar<br />

totalmente la cantidad de antibiótico presente en la<br />

muestra.<br />

Cuando se emplee el Método por filtración,<br />

también puede ser necesario el agregado de una<br />

beta-lactamasa apropiada a los medios de cultivo<br />

y/o a las soluciones de enjuague.<br />

La cantidad y/o tiempo de contacto deben ser<br />

establecidas mediante la validación del<br />

procedimiento.<br />

ESTERILIDAD DE LOS MEDIOS DE<br />

CULTIVO<br />

Verificar la esterilidad de cada lote incubando<br />

una muestra del mismo a la temperatura<br />

correspondiente a cada medio, durante 14 días o<br />

incubando un recipiente con medio no inoculado<br />

como control negativo en paralelo al ensayo de<br />

esterilidad.<br />

ENSAYO DE PROMOCIÓN DEL<br />

CRECIMIENTO<br />

Examinar cada lote para determinar su<br />

capacidad de promover el crecimiento microbiano a<br />

través de su inoculación en envases separados, con<br />

no más de 100 ufc de cada una de las cepas<br />

descriptas en la Tabla 1 e incubando en las<br />

condiciones especificadas.<br />

Los medios de cultivo son aceptables si existen<br />

evidencias de crecimiento en todos los envases<br />

inoculados dentro de los 3 días de incubación para<br />

bacterias y 5 días para hongos y levaduras. El<br />

ensayo de esterilidad no es válido si el medio de<br />

cultivo presenta una respuesta inapropiada al<br />

crecimiento microbiano.<br />

ALMACENAMIENTO<br />

Si los medios se almacenan en envases sellados<br />

pueden ser empleados durante no más de 1 año,<br />

pero se deben llevar a cabo los ensayos de<br />

promoción del crecimiento cada 3 meses y<br />

confirmar si cumplen con los requisitos<br />

correspondientes al color del indicador.<br />

Si los medios se almacenan en recipientes no<br />

sellados, pueden conservarse hasta 1 mes a menos<br />

que se haya validado un período mayor que no<br />

podrá exceder los 2 meses.<br />

Se recomienda conservar los medios de cultivo<br />

entre 2 y 25 °C.<br />

SOLUCIONES DE LAVADO Y DILUCION<br />

Solución A - Disolver 1 g de peptona de carne<br />

en Agua purificada hasta obtener 1 litro. Filtrar o<br />

centrifufar, si fuera necesario, para obtener una<br />

solución transparente. Ajustar a pH 7,1 ± 0,2,<br />

envasar en recipientes apropiados y esterilizar<br />

utilizando un procedimiento validado. [NOTA:<br />

cuando la Solución A deba ser empleada para<br />

realizar el ensayo de esterilidad de una muestra de<br />

antibióticos del tipo penicilina, cefalosporina,<br />

cefamicina o monobactámico, agregar<br />

asépticamente a la misma, una cantidad de<br />

betalactamasa estéril suficiente para inactivar el<br />

antibiótico residual en las membranas después que<br />

la solución muestra haya sido filtrada].<br />

Solución D - Agregar 1 ml de polisorbato 80<br />

por cada litro de Solución A cuando la muestra<br />

contiene lecitina, aceite o en los ensayos para<br />

determinar la esterilidad de las partes internas de<br />

dispositivos estériles por filtración a través de<br />

membrana. Ajustar a pH 7,1 ± 0,2. Transferir a los<br />

envases y esterilizar.<br />

Solución K -<br />

Peptona de carne ………………………... 5,00 g<br />

Extracto de carne ……………………….. 3,00 g<br />

Polisorbato 80 …………………………... 10,0 g<br />

Agua purificada c.s.p. …………………... 1.000 ml<br />

pH después de la esterilización: 6,9 ± 0,2.<br />

Distribuir en recipientes apropiados y esterilizar.<br />

ENSAYO DE APTITUD<br />

Antes de efectuar un ensayo de esterilidad de un<br />

producto dado, se deberá demostrar la ausencia de<br />

actividad bacteriostática y fungistática del mismo.<br />

El ensayo de aptitud deberá efectuarse cada vez que<br />

se cambia alguna condición del ensayo o cuando

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