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VOLUMEN I

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hígado de rata (fracción microsomal S-9) que ha<br />

sido previamente inducida con una mezcla de<br />

bifenilos policlorados de las que se encuentran<br />

comercialmente disponibles, o con una mezcla de<br />

fenobarbital y -naftoflavona. Una vez obtenida la<br />

fracción microsomal S-9, se fracciona y se conserva<br />

a-80ºC.<br />

Mezcla S-9<br />

En el momento de emplearlos se descongela un<br />

volumen de S-9 de acuerdo a las necesidades del<br />

ensayo y el volumen equivalente de mezcla de<br />

cofactores (ver Soluciones y medios de cultivo). Se<br />

prepara la mezcla S9: habitualmente se emplean<br />

concentraciones entre 5 y 30 % v/v de fracción<br />

microsomal en solución de cofactores. La elección<br />

dependerá del tipo de producto a ensayar.<br />

Recuperación de las cepas para su<br />

caracterización fenotípica y para la realización<br />

del ensayo<br />

Para cada ensayo las cepas de Salmonella se<br />

recuperan tomando una alícuota del cultivo<br />

congelado y transfiriéndola a caldos nutritivos (con<br />

el agregado de antibiótico en los casos que<br />

corresponda para evitar la pérdida de los plásmidos)<br />

de manera de obtener una densidad inicial<br />

aproximada de células de entre 10 6 y 10 7 ufc por<br />

ml. Los caldos se incuban a 35 – 37 °C hasta una<br />

densidad de 1-2 10 9 ufc por ml. Se sugiere<br />

realizar un recuento en placa, mediante diluciones<br />

seriadas, para confirmar el número de bacterias<br />

viables. De ahora en adelante estos caldos serán<br />

denominados Cultivos de trabajo.<br />

NOTA: el resto del cultivo congelado no se<br />

reutiliza.<br />

Caracterización fenotípica de las cepas de<br />

Salmonella typhimurium utilizadas para la<br />

realización del ensayo<br />

A continuación se describen los ensayos a<br />

realizar con las cepas de Salmonella typhimurium<br />

que se utilizarán para la realización del ensayo con<br />

el propósito de confirmar la identidad genética de<br />

las mismas y su tasa de reversión espontánea al<br />

carácter his+.<br />

Estos ensayos deben ser realizados cuando se<br />

reciban cepas nuevas, cuando se preparen cultivos<br />

para ser congelados o cuando se considere<br />

necesario.<br />

Procedimiento<br />

Los ensayos se realizan con cultivos de toda la<br />

noche en caldo nutritivo.<br />

a) Dependencia de histidina (his)<br />

Se realiza un aislamiento del cultivo en una<br />

Placa MG-biotina. Como todas las cepas utilizadas<br />

de Salmonella son dependientes de histidina, no<br />

debe observarse crecimiento luego de 48 horas de<br />

incubación a 35 – 37,0 ºC.<br />

b) Dependencia de biotina (bio)<br />

Se realiza un aislamiento del cultivo en una<br />

Placa MG-histidina. No debe observarse<br />

crecimiento, excepto con la cepa TA102 que es<br />

independiente de biotina, luego de 48 hs de<br />

incubación a 35 - 37 ºC.<br />

c) Dependencia de biotina e histidina (bio, his)<br />

Se realiza un aislamiento del cultivo en una<br />

Placa MG-biotina/histidina. Debe observarse<br />

crecimiento con todas las cepas luego de 24-48 hs<br />

de incubación a 35 - 37 ºC..<br />

d) Marcador rfa<br />

Se realiza un aislamiento del cultivo en una<br />

Placa MG-biotina/histidina, o en una placa de agar<br />

nutritivo. Se coloca un disco de papel de filtro<br />

estéril en el centro de la siembra y se aplican sobre<br />

él, 10 l de solución de cristal violeta al 0,1 %.<br />

Todas las cepas deben mostrar una zona de<br />

inhibición de crecimiento alrededor del disco<br />

después de 24 horas de incubación a 35 - 37 ºC.<br />

e) Deleción uvrB<br />

Se realiza un aislamiento del cultivo en una<br />

Placa MG-biotina/histidina o en una placa de agar<br />

nutritivo. Se irradia la placa con luz UV(C) durante<br />

un período de tiempo previamente estandarizado, se<br />

envuelve en papel de aluminio para evitar la<br />

fotorreparación en contacto con la luz y se incuba a<br />

35 - 37 °C. Excepto la cepa TA102 el resto de las<br />

cepas de Salmonella no crecen después de la<br />

irradiación.<br />

f) Presencia del plásmido pKM101 (resistencia<br />

a ampicilina)<br />

Se realiza un aislamiento del cultivo en una<br />

Placa MG-biotina/histidina/Ampicilina o en una<br />

placa de agar nutritivo con ampicilina (24 g por<br />

ml). Se incuba a 35 - 37 ºC y debe observarse<br />

crecimiento sólo con las cepas portadoras del<br />

plásmido pKM101.<br />

g) Presencia del plásmido pAQ1 (resistencia a<br />

tetraciclina)<br />

Se hace un aislamiento del cultivo en una Placa<br />

MG-biotina/histidina/Ampicilina/Tetraciclina o en<br />

una placa de agar nutritivo con tetraciclina (2 g<br />

por ml). Se incuba a 35 - 37 ºC y debe observarse<br />

crecimiento sólo con la cepa TA102 que es la única<br />

portadora del plásmido pAQ1.<br />

h) Frecuencia de mutación espontánea<br />

Para determinar la frecuencia de mutación<br />

espontánea de las cepas de Salmonella se emplea el

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