06.10.2014 Views

VOLUMEN I

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

2 0,2 1,1<br />

3 0,3 1,0<br />

4 0,4 0,9<br />

5 0,5 0,8<br />

6 0,6 0,7<br />

7 0,7 0,6<br />

8 0,8 0,5<br />

9 0,9 0,4<br />

10 1,0 0,3<br />

11 1,1 0,2<br />

12 1,2 0,1<br />

Tres tubos Control de<br />

células con 0 % de<br />

- 1,3<br />

hemólisis<br />

Tres tubos al 100 % de<br />

hemólisis<br />

- 1,3 ml de agua<br />

Agregar 0,2 ml de Eritrocitos de carnero sensibilizados<br />

a cada tubo, mezclar e incubar a 37 °C<br />

durante 60 minutos. Enfriar los tubos en un baño de<br />

hielo y centrifugar a 1.000 g durante 5 minutos.<br />

Medir la absorbancia del sobrenadante a 541 nm y<br />

calcular el grado de hemólisis (Y) por la fórmula<br />

siguiente:<br />

(A c – A 1 ) / (A b – A 1 )<br />

en la cual A c es la absorbancia de los Tubos 1 a 12,<br />

A b es la absorbancia media de los tres tubos con<br />

hemólisis al 100 % y A 1 es la absorbancia media de<br />

los tres tubos sin hemólisis.<br />

Representar una curva sobre papel doble logarítmico<br />

con los valores de Y/(1-Y) en función al<br />

volumen de complemento diluido en mililitros.<br />

Hallar la ecuación de la recta que mejor ajuste al<br />

conjunto de puntos y determinar el valor en ordenadas<br />

que corresponda al 50 % de dosis hemolítica del<br />

complemento donde Y/(1-Y) = 1,0. Calcular la actividad<br />

en unidades hemolíticas (CH 50 /ml) de acuerdo<br />

con la fórmula siguiente:<br />

C d /5C a<br />

en la cual C d es el valor inverso de la dilución del<br />

complemento, C a es el volumen en mililitros del<br />

complemento diluido que produce un 50 % de<br />

hemólisis y 5 el factor de escala para tener en cuenta<br />

el número de eritrocitos.<br />

El ensayo no será válido a menos que el gráfico<br />

sea lineal entre el 15 % y el 85 % de hemólisis y<br />

que el valor de la pendiente esté comprendido entre<br />

0,15 y 0,40 (preferentemente entre 0,18 y 0,30).<br />

Ensayo de la actividad anticomplemento<br />

Preparar una dilución del Complemento de cobayo<br />

ya titulado con Solución reguladora gelatinabarbital<br />

para obtener 100 CH 50 /ml. Agregar la<br />

inmunoglobulina a examinar, ajustada a pH 7 si<br />

fuera necesario. Preparar las mezclas siguientes de<br />

incubación para una inmunoglobulina que contenga<br />

50 mg por ml:<br />

<br />

Inmunoglobulina a ser<br />

examinada (ml)<br />

Control de complemento<br />

(por duplicado) (ml)<br />

Inmunoglobulina (50 mg por ml) 0,2 —<br />

Solución reguladora gelatina barbital 0,6 0,8<br />

Complemento 0,2 0,2<br />

Realizar en paralelo los ensayos sobre la inmunoglobulina<br />

a examinar y sobre controles negativos<br />

y positivos de AAC, preparados con inmunoglobulina<br />

humana según las indicaciones del<br />

prospecto que acompaña a la preparación de referencia.<br />

Si la sustancia a examinar contiene más o<br />

menos de 50 mg por ml de inmunoglobulina,<br />

ajustar adecuadamente los volúmenes de la preparación<br />

y de la Solución reguladora gelatinabarbital,<br />

por ejemplo, utilizar 0,33 ml de una<br />

preparación que contenga 30 mg por ml de inmunoglobulina<br />

y 0,47 ml de Solución reguladora<br />

gelatina-barbital para conseguir un volumen total<br />

de 0,8 ml. Tapar los tubos e incubar a 37 °C durante<br />

60 minutos. Agregar 0,2 ml de cada mezcla<br />

de incubación a 9,8 ml de Solución reguladora<br />

gelatina-barbital para diluir el complemento.<br />

Para determinar la actividad del complemento<br />

residual, realizar la Titulación del complemento en<br />

cada tubo según se ha descrito anteriormente.

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!