06.10.2014 Views

VOLUMEN I

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

muestra (ufc/ml). Si no se detectan colonias en las<br />

placas, expresar los resultados como menor a la<br />

inversa del valor de la dilución utilizada, por ejemplo<br />

para la dilución 1:10 se expresa como menor a<br />

10 ufc/g o ml de muestra. Tener en cuenta que el<br />

resultado se debe expresar en función de la dilución<br />

y el volumen sembrado.<br />

Siembra en superficie -<br />

Sembrar en superficie no más de 0,1 ml de la dilución<br />

final sobre al menos dos placas con Agar<br />

Digerido de Caseína-Soja previamente secadas en<br />

incubadora o campana de flujo laminar. Incubar a<br />

30 - 35 °C durante no menos de 3 días. Luego de la<br />

incubación, examinar las placas para observar si<br />

hubo desarrollo. Contar el número de colonias y<br />

expresar el promedio para las dos placas como el<br />

número de unidades formadoras de colonias por g<br />

(ufc/g) o por ml de muestra (ufc/ml). Si no se detectan<br />

colonias en las placas, expresar los resultados<br />

como menor a la inversa del valor de la dilución<br />

utilizada y el volumen sembrado.<br />

Tubos múltiples (número más probable – NMP -<br />

Agregar a cada uno de catorce tubos de ensayo<br />

de tamaño similar, 9 ml de Caldo Digerido de Caseína-Soja<br />

esterilizado. Distribuir doce de los tubos<br />

en cuatro grupos de tres tubos cada uno. Uno de los<br />

cuatro grupos servirá como control. Transferir 1 ml<br />

de la solución o suspensión de la muestra a cada<br />

uno de los tres tubos de un grupo (“100”) y a un<br />

cuarto tubo (A) y mezclar. Transferir 1 ml del contenido<br />

del tubo (A), al tubo restante (B) no incluido<br />

en ningún grupo y mezclar. Estos dos tubos contienen<br />

0,1 g (ó 0,1 ml) y 0,01 g (ó 0,01 ml) de la<br />

muestra, respectivamente. Transferir 1 ml del contenido<br />

del tubo (A) a cada uno de los tres tubos del<br />

segundo grupo (0,01) y 1 ml del contenido del tubo<br />

(B) a cada uno de los tubos del tercer grupo (0,001).<br />

Descartar el contenido remanente de los tubos (A) y<br />

(B). Tapar e incubar todos los tubos a 30 - 35 °C no<br />

más de 3 días. Luego del período de incubación,<br />

examinar los tubos para detectar turbidez: los tres<br />

tubos controles deben permanecer sin desarrollo y<br />

los tubos que contienen la muestra deben compararse<br />

con la Tabla 4 para determinar el NMP/g ó ml de<br />

producto. En caso que la turbidez de la muestra<br />

enmascare el desarrollo microbiano, subcultivar en<br />

el mismo caldo o en Agar Digerido de Caseína-Soja<br />

a 30 – 35 ºC durante 24 a 48 horas.<br />

Filtración -<br />

Usar filtros de membrana con tamaño nominal<br />

de poro no mayor de 0,45 µm. Elegir el material de<br />

la membrana tal que la eficiencia de la retención<br />

microbiana no sea afectada por los componentes de<br />

la muestra. Transferir la cantidad apropiada de la<br />

dilución de muestra a una membrana y filtrar inmediatamente.<br />

Lavar el filtro según se haya determinado<br />

previamente. Transferir la membrana a la<br />

superficie de una placa conteniendo Agar Digerido<br />

de Caseína-Soja. Incubar a 30 – 35 °C durante no<br />

menos de 3 días. Calcular el número de ufc por g ó<br />

ml de producto.<br />

En el caso de parches transdérmicos filtrar un<br />

volumen tal que la muestra filtrada corresponda a<br />

una unidad. Expresar el recuento como ufc / parche.<br />

Informe de los resultados -<br />

En los métodos de recuento en placa el número<br />

de microorganismos aerobios totales se informará<br />

como la sumatoria de todas las colonias desarrolladas<br />

en las placas de Agar Digerido de Caseína-Soja<br />

incluidos hongos filamentosos y levaduras.<br />

Recuento combinado de hongos filamentos y<br />

levaduras<br />

Siembra en profundidad –<br />

Proceder según se indica en Recuento de microorganismos<br />

aerobios totales empleando Agar Sabouraud<br />

Dextrosa o Agar Papa Dextrosa. Incubar<br />

las placas sin invertir, a 20 - 25 °C durante no menos<br />

de 5 días. Luego de la incubación, examinar las<br />

placas para observar si hubo desarrollo. Continuar<br />

según lo indicado en Siembra en profundidad para<br />

recuento de microorganismos aerobios totales.<br />

Siembra en superficie -<br />

Proceder según se indica en Recuento de microorganismos<br />

aerobios totales. Preparar al menos dos<br />

placas empleando Agar Sabouraud Dextrosa o Agar<br />

Papa Dextrosa para cada nivel de dilución, previamente<br />

secadas en incubadora o campana de flujo<br />

laminar. Sembrar en superficie no más de 0,1 ml<br />

sobre cada placa. Incubar a 20 – 25 °C durante no<br />

menos de 5 días. Luego de la incubación, examinar<br />

las placas para observar si hubo desarrollo. Continuar<br />

según se indica en Siembra en profundidad<br />

para Recuento de microorganismos aerobios totales,<br />

teniendo en cuenta el volumen sembrado.<br />

Filtración -<br />

Proceder según se indica en Recuento de microorganismos<br />

aerobios totales. Transferir la membrana<br />

a la superficie de una placa conteniendo Agar<br />

Sabouraud Dextrosa o Agar Papa Dextrosa. Incubar<br />

a 20 – 25 °C durante no menos de 5 días. Calcular<br />

el número de ufc por g ó ml de producto.<br />

En el caso de parches transdérmicos filtrar un<br />

volumen tal que la muestra filtrada corresponda a<br />

una unidad. Expresar el recuento como ufc / parche.<br />

Informe de los resultados -<br />

En los métodos de recuento en placa el número<br />

de microorganismos aerobios totales se informará

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!